01.05.2024

Выращивание и: Книга «Клематисы. Выращивание и уход» – купить книгу ISBN 985-13-1495-1 с быстрой доставкой в интернет-магазине OZON

выращивание и уход в открытом грунте, рассада из семян, как сохранить урожай

Содержание:

  1. Характеристики цукини
  2. Сорта цукини
  3. Посадка цукини
  4. Уход за цукини
  5. Сбор урожая

Цукини — родственник бесплодного кабачка, уже давно поселившегося на дачных участках россиян. Итальянский овощ в переводе на русский язык означает «небольшая тыковка». Считается, что кабачки и цукини родом из Америки, но наибольшую известность они получили в XIX веке, когда были привезены итальянскими эмигрантами в свою страну. Желающие собирать урожай цукини могут заниматься выращиванием и уходом в открытом грунте, даже не будучи специалистами в овощеводстве.

Характеристики цукини

Цукини — низкий кустарник, который в высоту достигает не более 120 см. Стебли растения не очень длинные, что позволяет  вырастить сразу несколько кустов цукини на 1 м2. Листья большие, темно-изумрудные. Наружная сторона ворсистая. Цветы — кремовые либо желтые. Плоды вырастают до 25 см. Цвет варьируется от темно-зеленого до желтого и даже черного. С одного куста можно собрать за сезон около 20 овощей, если правильно проводить подкормку цукини в открытом грунте.

В пищу овощ употребляется свежим и приготовленным. Помимо плодов, съедобными являются и цветы. Мякоть цукини используют для изготовления омолаживающих масок, а сам плод рекомендуют регулярно употреблять при нарушениях работы ЖКТ и болезнях печени.

Сорта цукини

Планируя собирать на даче урожай цукини, выращиванием и уходом в открытом грунте нужно заниматься после выбора конкретного сорта. Самые известные из представленных на рынке следующие:

  1. Цукеша. Результат совместной работы селекционеров России и Украины. Выращивается на Дальнем Востоке, в Среднем Поволжье и Центральном регионе. Форма куста компактная, выращивается на грядках и в тепличных условиях. От появления всходов до сбора урожая требуется всего 50 дней. С 1 м2 собирают до 12 кг цукини.
  2. Скворушка. Похож на предыдущий сорт. Созревает за 46–57 дней. Мякоть нежная, вкусная. Масса одного плода от 700 г до 1,1 кг. С 1 куста собирают более 7 кг плодов. Сорт районирован в Волго-Вятском и Центральном регионах.
  3. Куанд. Результат работы кубанских и петербургских селекционеров. Создан для выращивания в теплицах, поэтому может давать урожай в суровом климате Западно-Сибирского, Уральского, Северо-Западного и Северного региона. Созревает за 60 дней. С 1 куста получают до 24,8 кг цукини.
  4. Желтоплодный. Выращивается на грядках Центрального, Восточно-Сибирского, Дальневосточного, Северо-Кавказского и других регионов. Дает урожай через 43–62 дня. Промышленный объем урожая достигает 781 ц/га, в Краснодарском крае — около 1200 ц/га. Плод массой 0,7–1,8 кг обладает оригинальной окраской — желтая кожура покрыт густой оранжевой сеткой.

Перечисленные и другие сорта отличаются формой, окраской, сроком созревания, районированием и потребностями в уходе. Советы опытных садоводов по выращиванию рассады цукини читайте ниже в статье.

Посадка цукини

Рекомендуется заниматься посадкой в середине мая, чтобы заморозки не угрожали рассаде. Берут сухие или уже пророщенные семена. Обязательное условие — увлажненный грунт.

Допускается, чтобы на грядках до цукини выращивались: лук, капуста, зелень, томаты и корнеплоды. Не рекомендуется использовать участок, где выращивались огурцы, бахчевые и тыквенные культуры.

Подготовка почвы

Культура требовательна к плодородности почвы. В зависимости от региона, нужно добавлять те или иные удобрения:

  1. Торфяной грунт. Понадобится 2 кг компоста, 1 ведро глинистой почвы, по 1 ч. л. сульфата калия и суперфосфата, 2 ст. л. золы на 1 м2. Внести компоненты, перекопать грядки, пройти граблями и полить раствором «Росса» либо «Агрикола-5» из расчета 1 ст. л. на 10 л воды. Дозировка 3 л на 1 м2. Удобренные грядки укрывают пленкой, чтобы сберечь влагу и тепло.
  2. Глинистый грунт. Понадобится 3 кг торфа, столько же гумуса и опилок, 1 ст. л. суперфосфата и 2 ст. л. золы на 1 м2.
  3. Песчаный грунт. Понадобится 1 ведро глинистой почвы, столько же торфа, по 3 кг опилок и гумуса на 1 м2.
  4. Чернозем. Понадобится 2 кг опилок, 1 ст. л. суперфосфата и 2 ст. л. золы на 1 м2.

Перед тем, как выращивать цукини в открытом грунте, землю перекапывают и удаляют из нее корни сорняков и личинки жуков. Сроки посадки

К посевной приступают, когда грунт прогреется до +12°C. Такой период наступает примерно к середине мая. При неустойчивом характере погоды посадку откладывают на неделю. Если планируется высаживать рассаду, подходящее время — с конца мая до начала июня. Чтобы к этому сроку вырастить рассаду, посевом семян нужно заниматься в конце апреля либо в начале мая.

Посев семян на рассаду

Благодаря выращиванию цукини на рассаду, можно ускорить получение урожая и увеличить его объем. Понадобится магазинный грунт с нейтральной кислотностью. Можно самостоятельно приготовить подходящий субстрат из 50% торфа, 20% перегноя и такого же количества дерновой почвы, добавив 10% опилок. Семена рассаживают поштучно в горшочки примерно за месяц до начала выращивания цукини в открытом грунте. До появления ростков в помещении поддерживают температуру около +22°С, далее на неделю снижают до +18°С во избежание вытягивания стеблей, потом возвращают на первоначальный уровень.

Рассаду подкармливают через 10 дней после всходов раствором из 1 л воды, 3 г карбамида и 7 г суперфосфата. По прошествии месяца ростки переносят под укрытие (в первых числах мая) или на грядки (в начале июня).

Высадка в грунт

Выращивание цукини в открытом грунте начинается с подготовки лунок на расстоянии около 1 м друг от друга. Увлажняют грунт, по необходимости — удобряют, помещают в каждую лунку по 2 семечка. После появления на ростках настоящих листочков, хилые всходы удаляют или пересаживают на свободные места.

Уход за цукини

Вне зависимости от способов выращивания, правила ухода одинаковые.

Полив

Растение нуждается в регулярном умеренном поливе. Так удовлетворяется потребность цукини во влаге, но без перебора, позволяющего развиваться грибковым болезням. Желательная температура воды во время полива — до +22°С. Если использовать холодную воду, рост остановится, есть риск загнивания завязей. Если вода слишком горячая, корни получают ожог, растение погибает.

Подкормка

Выбирая, чем подкормить цукини во время цветения и на других стадиях вегетации, учитывают основные потребности культуры. Дефицит кальция чреват загниванием плодов. Чтобы не допустить этого, грядки поливают раствором из 10 л воды и 1 ч. л. кальциевой селитры. Другой важный элемент для культуры — бор. Чтобы дать растению нужный объем этого микроэлемента, используют раствор из 1 ведра воды и ½ ч. л. препарата «Бор-Актив».

Обработка от вредителей и болезней

Рекомендации садоводов о том, как правильно выращивать цукини, обязательно включают в себя советы по профилактике и борьбе с вредителями, а также распространенными заболеваниями.

Растение подвержено следующим болезням: мучнистая роса, белая гниль, мозаика. Насекомые, наносящие вред культуре: паутинный клещ, ростковая муха, медведка и тля. Профилактика заключается в поддержании оптимальной влажности грунта, прореживании посадок, применении фунгицидов и биопрепаратов от вредителей, о правилах применения которых можно узнать из других статей на сайте.

Сбор урожая

Цукини собирают по мере созревания каждые 2 дня, не реже. Именно такая периодичность позволяет получить плоды наилучшего качества и стимулировать созревание новых.

выращивание и уход. — полезные статьи

МАГИЧЕСКАЯ ЭУСТОМА.

За последние годы селекционерам удалось создать небывалые сорта эустомы как с очень высокими стеблями, достигающими 80-90 см, так и компактными- до 20см.
На одном растении за сезон распускается до двух десятков роскошных цветков, а благодаря тому, что они раскрываются не одновременно, эустома сохраняет привлекательность в течение продолжительного времени.

В южной части России эустому выращивают в садах как декоративное растение.
В прохладном климате отдают предпочтение горшечной культуре, которую растят не только в квартире, но и на верандах, балконах.

Выращивание из семян:

  • Посев семян проводят с декабря по июнь, в зависимости от того – когда нужно получить цветущее растение.
  • Для эустомы хорошо подходит готовый грунт, предназначенный для выращивания фиалок.
  • В смесь нужно просеять песок и добавить перлит. Подойдет для посева также смесь из торфа, садовой земли и песка в соотношении 2:1:0,5.
  • Главное, чтобы почва получилась легкой и воздухопроницаемой и не имела высокой кислотности.
  • Увлажнив почву, сеем семена поверхностно, без заглубления и присыпания.
  • Так как это дражированные семена, чтобы ускорить их всходы, намокшую оболочку семян можно раздавить зубочисткой.
  • После этого семена опрыскивают из мелкого распылителя.
  • Ящик с посевами накрывают стеклом или пленкой.
  • Необходимо обеспечить дополнительное освещение — примерно 40Вт/м.кв. при температуре 16-19°с.
  • Всходы появятся через 20-25 дней.
  • Пересаживают рассаду в емкость большего объема в фазе 4-х настоящих листьев.
  • Почвенная смесь для пикировки используется такая же, как и для посева. Чтобы всходы эустомы не почернели, достаточно при первом поливе после пикировки использовать раствор фунгцида.
  • Для лучшего укоренения рассаду эустомы можно опрыскать раствором «Эпина» (3-4 капли на 100 мл воды).
  • В дальнейшем температуру желательно поддерживать на уровне 22-24°с днем.
  • Раз в две недели нужно подкармливать рассаду минеральным удобрением, снижая указанную на упаковке концентрацию в два раза.

Услуги для непродуктивных животных. Выращивание и оценка молодняка непродуктивных животных. Общие требования – РТС-тендер

ГОСТ Р 56385-2015

ОКС 03. 080.30

Дата введения 2016-01-01

1 РАЗРАБОТАН Некоммерческой организацией «Союз предприятий зообизнеса» (СПЗ), Обществом с ограниченной ответственностью «Кошкин дом» (ООО «Кошкин дом»), Автономной некоммерческой организацией «Научно-исследовательский институт кинологии» (АНО «НИИ Кинологии»)

2 ВНЕСЕН Техническим комитетом по стандартизации ТК 140 «Продукция и услуги для непродуктивных животных»

3 УТВЕРЖДЕН И ВВЕДЕН В ДЕЙСТВИЕ Приказом Федерального агентства по техническому регулированию и метрологии от 9 апреля 2015 г. N 233-ст

4 ВВЕДЕН ВПЕРВЫЕ

5 ПЕРЕИЗДАНИЕ. Февраль 2020 г.

Правила применения настоящего стандарта установлены в статье 26 Федерального закона от 29 июня 2015 г. N 162-ФЗ «О стандартизации в Российской Федерации». Информация об изменениях к настоящему стандарту публикуется в ежегодном (по состоянию на 1 января текущего года) информационном указателе «Национальные стандарты», а официальный текст изменений и поправок — в ежемесячном информационном указателе «Национальные стандарты».

В случае пересмотра (замены) или отмены настоящего стандарта соответствующее уведомление будет опубликовано в ближайшем выпуске ежемесячного информационного указателя «Национальные стандарты». Соответствующая информация, уведомление и тексты размещаются также в информационной системе общего пользования — на официальном сайте Федерального агентства по техническому регулированию и метрологии в сети Интернет (www.gost.ru)

Настоящий стандарт устанавливает общие требования к выращиванию и оценке молодняка непродуктивных животных, как породистых, так и беспородных.

Настоящий стандарт распространяется на услуги по разведению непродуктивных животных в части выращивания и оценки молодняка собак, кошек и хорьков.

Настоящий стандарт предназначен для юридических лиц, индивидуальных предпринимателей, физических лиц, осуществляющих деятельность в области разведения непродуктивных животных в части выращивания и оценки молодняка собак, кошек и хорьков.

В настоящем стандарте использованы нормативные ссылки на следующие стандарты:

ГОСТ Р 54953 Продукция для непродуктивных животных зоотехническая. Термины и определения

ГОСТ Р 54955 Услуги для непродуктивных животных. Термины и определения

Примечание — При пользовании настоящим стандартом целесообразно проверить действие ссылочных стандартов в информационной системе общего пользования — на официальном сайте Федерального агентства по техническому регулированию и метрологии в сети Интернет или по ежегодному информационному указателю «Национальные стандарты», который опубликован по состоянию на 1 января текущего года, и по выпускам ежемесячного информационного указателя «Национальные стандарты» за текущий год. Если заменен ссылочный стандарт, на который дана недатированная ссылка, то рекомендуется использовать действующую версию этого стандарта с учетом всех внесенных в данную версию изменений. Если заменен ссылочный стандарт, на который дана датированная ссылка, то рекомендуется использовать версию этого стандарта с указанным выше годом утверждения (принятия).

Если после утверждения настоящего стандарта в ссылочный стандарт, на который дана датированная ссылка, внесено изменение, затрагивающее положение, на которое дана ссылка, то это положение рекомендуется применять без учета данного изменения. Если ссылочный стандарт отменен без замены, то положение, в котором дана ссылка на него, рекомендуется применять в части, не затрагивающей эту ссылку.

В настоящем стандарте применены термины по ГОСТ Р 54955 и ГОСТ Р 54953, а также следующие термины с соответствующими определениями:

3.1 заводчик: Физическое лицо или юридическая организация, владеющие самкой, произведшей молодняк.

3.2 молодняк: Приплод непродуктивных животных.

4.1 Разведение непродуктивных животных могут осуществлять юридические лица — организации и предприятия различных форм собственности, физические лица и индивидуальные предприниматели.

4.2 Разведение непродуктивных животных осуществляется в целях улучшения здоровья, продуктивности, контактности с человеком, выращивания непродуктивных животных надлежащего качества, оценки молодняка, сохранения генофонда и выведения новых пород.

4.3 Разведение непродуктивных животных состоит из следующих этапов:

— подготовка самки и самца непродуктивных животных к спариванию;

— содержание беременной самки;

— содержание кормящей самки и молодняка;

— выращивание молодняка;

— реализация молодняка;

— оценка молодняка.

К каждому этапу разведения устанавливают определенные требования.

5.1 Подготовка самки и самца к спариванию

5.1.1 Спаривание и получение молодняка возможно только от самки и самца, не имеющих дефектов развития, генетических заболеваний, инфекционных и паразитарных болезней, иных заболеваний, не находящихся в состоянии выздоровления или на стадии реабилитации после перенесенных заболеваний, травм, операций [1].

5.1.2 Самка и самец должны иметь ветеринарный документ образца, установленного для данного вида непродуктивного животного, необходимые вакцинации, противопаразитарные обработки, проведенные в установленные сроки.

5.1.2.1 При спаривании хорьков животным необходимо предоставить нейтральное помещение или клетку, исключающую территориальную конкуренцию [1].

5.1.3 Возраст самки, допускаемой к разведению, составляет:

— для собак — не менее 18 мес;

— для кошек — не менее 12 мес;

— для хорьков — 10 мес.

5.1.4 Возраст самца, допускаемого к разведению, согласно [2], [3] составляет:

— для собак — не менее 12 мес;

— для кошек — не менее 10 мес;

— для хорьков — 8 мес.

5.1.5 Частота получения молодняка должна быть не менее одного года между рождением потомства у самок собак, 10 мес — у самок кошек и хорьков [1]-[3].

5.2 Содержание беременной самки

5.2.1 Не допускается содержание более двух беременных самок собак, трех беременных самок кошек в одном помещении (комнате, вольере) и более одной беременной самки хорька в одной клетке. Содержание беременных самок допускается в жилых или специально оборудованных для содержания животных нежилых помещениях, исключающих травматизм животных, в соответствии с [1]-[4].

5.2.2 Беременные самки должны быть обеспечены необходимым рационом, моционом и уходом с учетом вида и особенностей протекания беременности у непродуктивных животных данного вида.

5.2.3 Беременные самки должны контактировать или находиться под непосредственным присмотром человека не менее 14 ч в сутки согласно [4], [5].

5.2.4 К моменту наступления родов заводчик обязан обеспечить родильное гнездо в соответствии с видовыми требованиями животного и квалифицированную помощь при родовспоможении, если таковая необходима для сохранения здоровья, жизни самки и молодняка.

5.2.5 Во время процесса рождения молодняка заводчик обязан применить все меры по сохранению жизни и здоровья самки и молодняка, за исключением эвтаназии нежизнеспособного приплода либо приплода с дефектами, снижающими качество жизни животного, согласно [4]-[6].

5.3 Содержание кормящей самки и приплода

5.3.1 Не допускается содержание с приплодом более двух кормящих самок собак, более трех самок кошек в одном помещении (комнате, вольере), более одной самки хорька в одной клетке. Содержание кормящих самок допускается в жилых или специально оборудованных для содержания животных нежилых помещениях.

5.3.2 Кормящим самкам и приплоду рекомендуется обеспечить необходимые по их видовым требованиям рацион, моцион и уход с учетом особенностей протекания вскармливания у животных данного вида [1], [4], [5].

5.3.3 Самкам собак и кошек с приплодом до 30-дневного возраста рекомендуется контактировать или находиться под непосредственным присмотром человека не менее 14 ч в сутки. Приплод собак и кошек старше 30-дневного возраста должен находиться в контакте с человеком или под непосредственным присмотром человека не менее 18 ч в сутки [4], [5].

5. 3.4 Заводчик животного обязан предпринимать все необходимые меры для сохранения жизни и здоровья кормящей самки и приплода.

5.4 Выращивание молодняка

5.4.1 Выращивание молодняка включает в себя следующие услуги по уходу: кормление, содержание, профилактику и лечение заболеваний животных с момента рождения приплода.

5.4.2 Заводчик должен предпринять все меры для полноценного выращивания молодняка, в т.ч. обеспечить его видовые потребности приплода, физиологически обоснованные прикармливание и кормление, профилактические мероприятия по предотвращению паразитарных и инфекционных заболеваний или их своевременное лечение, предупреждение травматизма и гибели приплода.

5.4.3 Заводчик должен обеспечить полноценное формирование физиологических и поведенческих характеристик, типичных для непродуктивных животных соответствующих видов, включая внутривидовую социализацию и адаптацию к среде последующего содержания (квартира, вольер и т. п.).

5.4.4 Заводчик должен обеспечить условия для кормления, сна, гигиенических процедур, игр, общения с себе подобными и с людьми от рождения приплода до его передачи другому владельцу.

5.5 Реализация молодняка

5.5.1 К реализации допускается молодняк, представляющий здоровый приплод непродуктивных животных, достигших возраста физиологической независимости от кормящей самки и должной поведенческой и иммунологической защищенности.

5.5.2 Молодняк непродуктивных животных, поведенчески адаптированный и социализированный, должен быть лоялен к человеку, неагрессивен, терпим к прикосновениям, приучен к содержанию в городской среде [5], [7], [8].

5.5.3 Возраст молодняка собак, кошек и хорьков для реализации должен быть не младше восьми недель, при достижении ими устойчивого иммунитета после вторичной иммунизации [5], [7].

5.5.4 Молодняк должен иметь ветеринарный документ установленного образца, подтверждающий проведение профилактических обработок от паразитарных инфекций и вакцинаций, установленных ветеринарным законодательством. Молодняк собак дополнительно вакцинируется от чумы плотоядных, парвовирусного энтерита, лептоспироза, гепатита. Молодняк кошек дополнительно вакцинируется от панлейкопении кошек, вирусного ринотрахеита, калицивирусной инфекции. Молодняк хорьков дополнительно вакцинируется от лептоспироза и бешенства.

5.5.5 Молодняк собак, кошек, хорьков должен иметь имплантированный идентификационный микрочип.

5.5.6 Молодняк, продаваемый как породистый, должен иметь подтверждение о регистрации в племенной книге организации, ведущей племенной учет, и иметь свидетельство о происхождении.

5.6 Оценка молодняка

5.6.1 Оценка молодняка проводится с использованием зооинженерных подходов, принятых в практике выращивания непродуктивных животных.

5.6.2 Для оценки молодняка используют визуальный и мануальный осмотры, проводится взвешивание молодняка, а также осмотр помещений, в которых содержатся самка и приплод, учитывается физиологическое состояние самки.

5.6.3 Оценка молодняка определяется по двум направлениям: качество и количество приплода в целом и качество каждой головы приплода отдельно.

Качество молодняка в целом определяется исходя из условий содержания и выращивания, состояния, поведения самки и приплода при осмотре. Количество приплода фиксируется в акте осмотра.

Индивидуальная оценка головы приплода снижается при наличии более низкой оценки содержания и выращивания.

5.6.4 Оценку молодняка в целом подразделяют на три категории: первую, вторую и третью.

Характеристики категорий оценки качества молодняка в целом приведены в таблице 1.

Таблица 1 — Характеристики категорий оценки молодняка в целом и самки

Обозначение категории

Характеристики категории приплода в целом и самки

Первая категория — отлично

Приплод здоровый, упитанный, активный, не пугливый, не испачкан фекалиями, хорошо поедает корм, содержится в чистом гнезде, в помещении, исключающем травматизм, но дающем необходимую свободу для перемещения и игр.

Самка здоровая, не истощенная, ухоженная, ведет себя непугливо

Вторая категория — хорошо

Приплод здоровый, достаточно упитанный, активный, не пугливый, хорошо поедает корм, но содержится с незначительными нарушениями: недостаточное для игр, но не тесное помещение, недостаточно чистое гнездо и/или место содержания, место содержания не исключает травматизм.

Эту же категорию присваивают приплоду, рожденному в результате кесарева сечения самки, выкормленному искусственно в отсутствие самки.

Самка при осмотре выглядит неухоженной, с легкой недостаточностью массы тела, умеренно пугливой

Третья категория — удовлетворительно

Приплод имеет признаки болезни, истощения, паразитарных и иных инфекций, апатичный, нервозный, боящийся рук при осмотре, даже при наличии указанных признаков у одной головы приплода.

К этой категории также относят любой приплод, содержащийся в тесных условиях, исключающих возможность игр, в грязном гнезде и/или в грязном помещении, не поедающий корм во время осмотра, любой приплод, содержащийся в присутствии животных с признаками инфекционных и паразитарных заболеваний, приплод самки истощенной, имеющей признаки заболеваний, грязной и неухоженной, приплод, содержащийся в местах, где высок риск получения травмы

5.6.5 Оценку одной головы (единицы) приплода подразделяют на три категории: первую, вторую и третью.

Характеристики категорий оценки качества приведены в таблице 2.

Таблица 2 — Характеристики категорий оценки одной головы (единицы) приплода

Обозначение категории

Характеристики категории одной головы (единицы) приплода

Первая категория — отлично

Голова приплода ухоженная, здоровая, активная, не имеющая визуально определяемых дефектов развития, активно поедающая корм, не боящаяся рук при осмотре, не имеющая недостатка массы тела и роста, если таковые определяются породными требованиями

Вторая категория — хорошо

Голова приплода здоровая, активная, поедающая корм, не имеющая визуально определяемых дефектов развития, не боящаяся рук при осмотре, не имеющая недостатка веса и роста, если таковые определяются породными требованиями, но с минимальной недостаточностью массы тела без признаков истощения либо перекормленная с признаками ожирения и/или недостаточно ухоженная — имеет легкое загрязнение фекалиями или остатками корма

Третья категория — удовлетворительно

Голова приплода с признаками паразитарного, инфекционного и иного заболевания, апатичная или пугливая, с признаками истощения, не поедающая корм, имеющая дефекты развития или видимые последствия травм, сильно загрязненная фекалиями или остатками корма

5. 6.6 Оценка молодняка проводится комиссией в составе: заводчика, представителя организации, контролирующей получение приплода от данной самки, зооинженера или ветеринарного специалиста, имеющего подготовку в области зоотехнической оценки молодняка непродуктивных животных данного вида.

5.6.7 С целью оценки составляется акт осмотра молодняка.

В акте осмотра молодняка указывают дату осмотра, сведения о лице (лицах), участвующих в оценке, сведения о виде и породе животных, кличках и идентификационных данных самки и самца, контактные данные владельца самки, фактический адрес содержания самки, дату спаривания и дату рождения приплода, описывается весь приплод с указанием пола, окраса, идентификационных микрочипов.

В акте осмотра фиксируются результаты осмотра и оценки как всего приплода, так и отдельных единиц приплода. Акт осмотра подписывается лицами, участвующими в комиссии. Копии акта осмотра рекомендуется выдавать приобретателю с каждой головой приплода. Рекомендуемая форма Акта осмотра молодняка для оценки представлена в приложении А.


Приложение А
(рекомендуемое)

АКТ
осмотра приплода для целей оценки молодняка

N _______

дата _______

Вид животного

Порода

Дата рождения

Количество приплода

Адрес местонахождения (содержания) приплода

Состав комиссии

Показатели приплода

Номер приплода по порядку

Приплод 1

Приплод 2

Приплод 3

Приплод 4

Идентификационный микрочип

Пол

Окрас

Масса (вес)

Высота в холке или длина тела

Состояние зубов

Поведение

Поедание корма

Дефекты (описать подробно)

Происхождение

Отец (самец)

Мать (самка)

________________

Заполняется членом комиссии, при наличии свидетельств о рождении самки и самца указываются их номера.

Выращивание приплода

Отличное

Хорошее

Неудовлетворительное

Крепкий, подвижный, активный, с блестящей шерстью, хорошо развитой мускулатурой, координированный, уверенный в себе

Толстоватый, рыхловатый, не очень уверенный в себе, умеренно активный, слегка загрязненный

Недокормленный, ожиревший, вялый, трусливый, с тусклой шерстью, отвисшим животом, с наличием блох, признаками заболеваний и/или глистных инвазий, с признаками рахита

Дополнительные сведения:

Дополнительные сведения:

Дополнительные сведения:

________________

Заполняется членом комиссии, обнаруженные при осмотре признаки необходимо подчеркнуть и при необходимости дополнить.

Содержание самки и приплода

Отличное

Хорошее

Неудовлетворительное

Помещение сухое, светлое, проветриваемое, чистое, выгул огорожен, опасных для приплода предметов нет

Небольшой выгул, не исключен травматизм

Помещение сырое, затхлое, темное, тесное.

Животные содержатся скученно, без выгула

Дополнительные сведения:

Дополнительные сведения:

Дополнительные сведения:

________________

* Заполняется членом комиссии, обнаруженные при осмотре признаки необходимо подчеркнуть и при необходимости дополнить.

Состояние самки

Хорошее

Удовлетворительное

Неудовлетворительное

Активная, мускулатура крепкая, шерсть блестящая, достаточно упитанная

Худоватая, рыхловаты связки и мышцы, живот распущен, тускловатая шерсть

Худая, шерсть тусклая или выпавшая, самка вялая, живот висит

Дополнительные сведения:

Дополнительные сведения:

Дополнительные сведения:

________________

Заполняется членом комиссии, обнаруженные при осмотре признаки необходимо подчеркнуть и при необходимости дополнить.

Врожденные характеристики

Всего родилось

Самцы

Самки

Мертворожденные самцы

Мертворожденные самки

С заметными дефектами (описать подробно)

Оставлено под самкой

самцы

самки

Кесарево сечение производилось

да

нет

Примечания

ФИО и подписи членов комиссии

Подпись заводчика

Сведения о владельцах (вид животного)

Кличка животного

Номер свидетельства о происхождении
(при наличии)

Номер идентифи-
кационного чипа

ФИО приобретателя, номер удостоверения  
личности

Адрес

Телефон

________________

Заполняется заводчиком.

[1]

Воспроизводство мелких животных. Патогенетика мелких животных / Под редакцией проф. Крачек. — М.: Ветеринария, 2009

[2]

Сотская М., Московкина Н. Племенное разведение собак. — М.: Аквариум, 2004

[3]

Bl-Lexikon Rasse-Katzen VEB Bibliografisches Institut Leipzig, 1988

[4]

Биотехнологии и ветеринария. Материалы межрегиональной научной конференции. — СПБГАУ, 2011

[5]

DieRegeln die Inhalte und den Verkauf von Hunden und Welpen im Jahr, 2014

[6]

Уиллис Малькольм Б. Генетика собак. Библиотека американского клуба собаководства — М.: Центрполиграф, 2000

[7]

Справочник по болезням домашних и экзотических животных / С.С. Липницкий с соавт. — Минск: Ураджай, 2002

[8]

Анатомия домашних животных / Под редакцией проф. Хрусталевой И.В. — М.: Колос, 1997

УДК 658.386:006.354

ОКС 03.080.30

Ключевые слова: выращивание непродуктивных животных, оценка молодняка, общие требования, категории оценки, акт осмотра

Лобелия ампельная: сорта, выращивание и уход

Лобелия ампельная — это неприхотливый однолетник, который садоводы чаще всего выращивают в подвесных корзинах. В дикой природе насчитывается более 300 различных видов лобелии, большинство из которых являются многолетниками и полукустарниками. Свое название растение получило в честь известного английского ботаника 16-го века Маттиаса де Л’Обеля. Лобелия ампельная — самый распространенный вид в садоводстве, который часто используют в ландшафтном дизайне и в качестве бордюрных растений.

Описание лобелии ампельной

Лобелия ампельная из семейства Колокольчиковых, цветы в основном синие, реже белые и желтые. Достигает 50 см в высоту, пышно и красиво цветет. Листья маленькие и во время цветения почти незаметны. В народе многие сравнивают лобелию с облаком из-за того, что густые цветки кучно расположены и покрывают большое пространство. Когда побеги достигают 20 см в длину, они начинают стремительно клониться к земле под тяжестью цветков. Ампельной лобелию называют не просто так, ведь она идеально подходит для выращивания в подвесных вазонах (ampel) и горшках. У растения также есть зигоморфные венички и двухгнездные завязи. Хоть лобелия и считается многолетником, но декоративные виды обычно живут не дольше года, по причине холодной зимы. Образует пышные и часто разноцветные кусты, которые станут настоящим украшением любого сада. Бутоны густо растут по всей длине стебля. Перед тем, как первый раз выращивать лобелию, лучше проконсультироваться с опытными цветоводами, ведь растение требует к себе внимания и хорошего ухода.

Сорта лобелии

Ампельная лобелия хороша как сама по себе, так и в паре с другими растениями. Она хорошо дополняет цветочные композиции и нормально уживается с соседями по участку. Существует большое количество видов и сортов лобелии, но популярными являются лишь некоторые из них. Большинство из них — это гибриды лобелии садовой, стебли которых обычно достигают 20-25 см и затем ниспадают. Самыми популярными сортами считаются “Сапфир”, “Белая леди” и “Розамунда”.

Лобелия сапфир

Популярная декоративная лобелия родом из Центральной Америки. В естественной среде сапфировая лобелия растет как многолетник, в наших широтах ее растят как однолетнее растение. Отличается длительным и пышным цветением и подойдет для выращивания в открытом грунте и в помещении. Середина цветка полностью белая, а листья имеют продолговатую форму с лиловым оттенком. Стебли до 30 см в длину образуют невероятно красивый куст. Цветение очень пышное, а после обрезки начинается его второй этап, который продолжается до самой зимы. У этого вида нет особых предпочтений к составу и кислотности почвы. Нейтральный уровень pH и рассада для цветущих культур станут отличным выбором для цветовода. Уход за сапфировой лобелией похож на уход за комнатным плющом. Умеренного количество света и регулярного полива будет вполне достаточно. Лобелию в принципе называют растением для ленивых садоводов.

Лобелия Эринус

Компактная садовая или бордюрная лобелия. В декоративном дизайне используется для бордюрного оформления.Обильно цветет все лето, с начала июня до середины сентября. Кусты вырастают до 15 см, с белыми, синими и голубыми цветами. Различают несколько видов и сортов бордюрной лобелии, включая каскадную, раскидистую и карликовую.

Белая леди

Небольшой изящный однолетник вырастает до 15 см в длину и имеет шаровидные кусты. Стебли покрыты миниатюрными белоснежными цветами. Зацветает на 3 месяц после посева и продолжает цвести с июня до самых заморозков. В Европу попало из Южной Африки, чаще всего эту лобелию можно увидеть в субтропиках. Цветоводы выращивают ее в специальных корзинах, на балконах, в цветниках и рокариях. Отлично сочетается с петуньей и гвоздикой. Предпочитает влажный грунт с большим количеством питательных веществ, морозоустойчива. Высаживают ее обычно в последней декаде мая. За кустом несложно ухаживать, главное обильно поливать и оберегать его от жары. После первой волны цветения почву вокруг лобелии нужно разрыхлить и добавить немного подкормок. Белая леди хорошо смотрится на краю садовой дорожки или возле декоративного пруда.

Красный каскад

Каскадные сорта лобелии спокойно растут как на солнце, так и в полутени. Хоть они и красиво смотрятся в открытом грунте, садоводы предпочитают выращивать их в кашпо. Этот однолетник с цветами красного цвета — 2 см в диаметре. Каскадные сорта нуждаются в своевременном и обильном поливе. Высеваются при помощи рассады, на улицу их переносят в конце мая. Растение не особо подвержено болезням, но не выносит заморозков. Благодаря длинным стеблям, хорошо подходит для террас и вертикальных клумб.

Лобелия кардинальская (пурпурная)

Свое название получила после остроумного сравнения королевы-регента Марии Медичи цветков растения с панталонами кардинала Ришелье. Родиной вида считаются водоемы северной Англии, из-за чего кардинальская лобелия хорошо растет как в воде, так и над водой. Имеет овальные листья темно-зеленой расцветки, которые могут принимать фиолетовую окраску. Цветы пурпурного цвета. При хорошем содержании цветонос достигает 50 см в длину. Для большей декоративной ценности растение иногда прищипывают, в результате чего на нем появляются дополнительные боковые побеги.

Лобелия синяя (Lobelia siphilitica)

Растение завезли в Европу из Северной Америки, фиолетово-синие цветки собраны в соцветия. Название растения также отмечено интересной историей. Считалось, что отвар из цветков растения лечит сифилис, однако впоследствии это, конечно, не подтвердилось. Большого распространения вид не получил, но стал основой для множества новых культур лобелий, включая популярный гибрид “Комплимент”.

Лобелия сильная (Lobelia valida)

Своим внешним видом напоминает сорт Эринус. Это весьма редкий и небольшой вид ампельной лобелии родом из Африки. Побеги прямостоячие, листва довольно крупная. Цветоводы ценят синюю лобелию за то, что она выгодно оттеняет более крупные растения. Цветки синие и крупные, посередине украшены белым пятном и внешне кажутся гораздо крупнее, чем многие виды ампельных лобелий.

Выращивание лобелии из семян

Цветущая лобелия — это незабываемое зрелище, которого можно добиться, если правильно посадить и ухаживать за семенами растения. Кусты с огромным количеством миниатюрных цветов превращаются в огромную красивую шапку. Выращивать растение можно до первых заморозков, и оно отлично сочетается с другими однолетниками. Высаживают лобелию из семян обычно при помощи рассады. Ампельную лобелию не так уж и просто вырастить — она часто гибнет из-за неправильного ухода. Начинающим цветоводам стоит помнить о том, что сорта с синими цветками, такие, например, как сильная и сапфировая лобелия, более устойчивы к холодам, чем остальные виды. В любом случае развитие рассады занимает не менее 60-80 дней, поэтому начинать высаживать семена лучше уже в феврале. Сразу задумайтесь над люминесцентным светом, фитолампой и другими видами искусственного освещения. Если света недостаточно, лобелия тормозит в развитии и может заболеть. Посадки всегда будут групповые, так как семена сравнительно небольших размеров. Рассаду можно посадить в торфяные таблетки, небольшие ящики, пластиковые стаканчики или коробку из-под яиц. Почва для рассады нужна с большим количеством торфа, но не слишком питательная. Семена не нужно присыпать грунтом или песком, достаточно будет опрыскать их из пульверизатора.

Корневая система у лобелии очень мягкая, а у рассады и вовсе практически воздушная. Поэтому очень важно вовремя поливать молодые саженцы и не давать грунту высохнуть. Как и для других декоративных растений, в поливе нужно придерживаться золотой середины, чтобы корни растения не загнили от избыточной влаги. Рассаду лучше “укрыть” специальной пленкой или крышкой. Частые подкормки растению ни к чему, достаточно будет один раз дать комбинированную питательную смесь, спустя месяц после посадки. Минеральный комплекс для цветов нужно растворить в воде и использовать для рассады дозу в 3 раза меньше, чем указано на упаковке. После того, как на улице потеплеет до +10-15 градусов, рассаду можно выносить на балкон “подышать свежим воздухом”. Такие прогулки стоит начинать с нескольких часов, постепенно увеличивая время пребывания. Прямые лучи теплого весеннего солнца могут оказаться губительными, поэтому лучше давать затененный или рассеянный свет. Чтобы кустики рассады выросли более пушистыми, можно их аккуратно подстричь. В случае, если вы планируете пересадить растение в подвесной горшок, после того, как оно вырастет до 5 сантиметров, подстригать его не нужно. Сроки посева рассчитывают исходя из сорта семян, освещения, почвы и времени года. Если хотите получить в конце апреля готовую рассаду, лучше начинать заготавливать ее уже в январе. Раннее выращивание может иметь свои последствия и навредить рассаде, поэтому опытные цветоводы рекомендуют начинать заготовку в феврале или начале марта.

Уход за лобелией

Самое главное в уходе за лобелией — это регулярный и правильный полив и хорошее освещение. Полив сеянцев — непростое занятие, с молодыми лобелиями нужно обходиться осторожно. Если вы используете торфяные таблетки, воду можно наливать прямо в поддон. Так вы гарантировано не заденете хрупкую зелень. При таком способе, лишнюю воду нужно сразу сливать, так как она может привести к гниению хрупких корней. Не лейте слишком много воды за раз, лучше воспользоваться специальной меркой. Если вы растите лобелию кучно, в коробках, то лейкой не обойтись, придется воспользоваться шприцом, с помощью которого можно будет устроить прикорневой полив. В случае недостатка света в помещении, сеянцы начнут вытягиваться за дополнительным освещением, а листики на них побледнеют. Чтобы устранить эту проблему, устройте досвечивание и снизьте температуру до +15 градусов. В целом работает такое правило — чем выше температура, тем больше света должно быть в помещении. Не все цветущие декоративные растения одинаково нуждаются в прищипывании. Например, уход за лобелией не предусматривает обрезки сеянцев, а уход за пеларгонией невозможен без своевременной обрезки. Если в помещении недостаточно света, обрезка только усугубит ситуацию и рассада приобретает болезненный вид. Каждый день нужно поднимать крышку и вытирать скопившийся конденсат, чтобы дать растению возможность нормально развиваться и не допустить возникновения грибка. Оптимальное время для проветривания — 10-15 минут утром и вечером. Черная ножка и плесень способны всего за 2 дня уничтожить плоды ваших трудов. Когда сеянцы пойдут в рост, крышку можно снимать. Если вы соблюдали режим “закаливания”, то рассада безболезненно переживет новые условия.

Взрослое растение гораздо более стойкое, чем рассада, а самый главный его враг — это засуха. Постарайтесь не допускать пересыхания субстрата, особенно в летнее время, когда листья и так могут получить ожоги от солнечного света. После регулярных просушек, либо после одной, но длительной, лобелия скорее всего погибнет. Высаживая лобелию в горшок, позаботьтесь о керамзите и прочем дренаже. Застой воды у корней привлечет не только вредителей, но и болезни. В летнюю жару настоящей проблемой может стать солнце. Как бы вы не переставляли растение в тень, прямые лучи часто будут попадать на отдельные участки, что приведет к пожелтению и ожогам. В дальнейшем их придется аккуратно удалить, чтобы растение не тратило жизненные силы на поддержание больных и слабых листьев. Примерно в июле лобелия пытается освободиться от устаревших листьев и цветов, чтобы достать питательные вещества из почвы. Июль — лучшее время для того, чтобы внести подкормки и провести радикальную обрезку. Это позволит обновить лобелию и она сможет зацвести еще раз. Обрезают кустики примерно на 10 см и, если обойтись без варварских методов, уже через 2 недели она снова покроется цветами. В период цветения воздержитесь от азотных удобрений и обратите внимание на подкормки с сульфатом калия. После таких удобрений кустарник цветет так обильно, что листьев практически не видно за большой кроной.

Полезные и лечебные свойства лобелии

Благодаря своему химическому составу, лобелия является отличным средством в лечении различных инфекционных заболеваний. Врачи назначают отвары и средства на основе целебного растения при лечении артериальной гипертонии, проблемами с сердцем и сосудистой системой. Он также улучшает общий тонус организма и рекомендован при большой кровопотери. Алкалоид лобелин, который с избытком содержится во всех Колокольчиковых, стимулирует работу бронхов и рекомендован людям, которые бросают курить, а в медицинской практике он используется как аналептик и стимулятор дыхания. Входит в состав множества лекарств как вспомогательное и основное средство. Лобелия точечно воздействует на организм и “помогает” там, где это нужно больше всего. Лобелия — это адаптоген, который убирает застой и перегрузки в бронхах и ЦНС. При серьезных воспалительных процессах и заболеваниях ЦНС, препараты, содержащие лобелин, прописывают в качестве вспомогательных природных средств. Растение задерживает свободные радикалы и обладает антиоксидантным средством, поэтому буквально предотвращает множество дегенеративных процессов в организме.

Препарат лобелина гидрохлорид используют во время астмы, при бронхите и асфиксии у младенцев. В Америке популярно множество БАДов, в составе которых есть лобелия или большинство ее компонентов. Листовой чай и травяная настойка из растения хорошо показали себя в борьбе со стафилококком и при диарее. Группа азиатских ученых еще в 2012 году провела испытания на крысах с эпилепсией. Результаты опытов были многообещающие, однако, с тех пор серьезных клинических испытаний не проводилось и эффективность лобелина пока не доказана. Известно, что лобелин стимулирует выделение дофамина и по своему воздействию похож на принцип работы никотина. Возможно применение спиртовой настойки в комплексной терапии при никотиновой зависимости. Фитотерапевты считают лобелию одной из самых целебных трав в мире. Существует десятки таблеток, которые содержат в себе лобелин и другие действующие вещества. После длительного пребывания под водой или при острой нехватке кислорода, лобелия поможет организму прийти в норму в кратчайшие сроки. Препараты на основе лобелии имеют седативный эффект, поэтому чаи и отвары можно принимать для лечения бессонницы, но перед этим лучше проконсультироваться с врачом.

Табак: выращивание и уход — yourchoice.ru

Выращивание из семян

Перед посадкой семян грунт необходимо подготовить. Для этого смешиваются земля, торфяная подкормка и немного перегноя в соотношении 1:1:1. Емкость для рассады должна быть неглубокой. Перед посадкой семена следует завернуть в увлажненную ткань на несколько дней, но не стоит ждать, пока они прорастут. Важно, чтобы они напитались влагой и были готовы к высадке.

Так как семена табака мелкие, нужно стараться равномерно распределять их по всей подготовленной почве. Когда посевы готовы, их следует увлажнять из пульверизатора. После чего емкость нужно накрыть пленкой или стеклом и оставить в месте, где температура будет от +20 до +22 градусов. Это создаст парниковый эффект и ускорит прорастание рассады.

Семена сеют в конце февраля – начале марта. Нужно не забывать опрыскивать почву и следить за температурным режимом. Первые ростки пробьются не сразу, придется подождать около двух недель. Они будут крепкими и продолжат свой рост без укрытия, главное – обеспечить хорошую освещенность.

Не стоит высаживать семена в открытый грунт сразу, потому что шансы на их прорастание в такой среде крайне малы –табак очень любит тепло. Высадку можно начинать, только когда рассада окрепнет.

Рассаду следует поливать с такой периодичностью, чтобы почва не пересыхала, но и не была слишком влажной. Когда ростки окрепнут, можно начинать рыхлить почву, только делать это нужно осторожно. По индивидуальным «стаканчикам» нужно высаживать растения, когда появятся два листочка.

Время высаживания душистого табака в открытый грунт зависит от погодных условий. Поэтому каждый садовод решает, когда пришло время, самостоятельно. Это зависит от региона, от климата, от того, насколько прогрелась почва. Приблизительно это нужно делать в мае, но если земля будет недостаточно прогретой, то рассада может погибнуть от переохлаждения.

Растения высаживают на расстоянии 20–30 сантиметров друг от друга, так как кустики хорошо разрастаются. Если посадить ближе, то они будут мешать.

Популярные виды табака для выращивания в саду

Чтобы начать выращивать декоративный душистый табак, нужно ознакомиться с их разновидностями. Они относятся к семейству пасленовых – неприхотливы в уходе, являются декоративными и активно цветут в благоприятных условиях.

Табак «лесной»

Куст может достигать 1,5 метра в высоту. У растения прямые стебли, на которых появляются белые бутоны. Его родина – Бразилия. Данный вид часто применяется как фоновая часть, поэтому высаживается в клумбе на заднем плане.

Табак «лангсдорфа»

Однолетник, высота куста составляет около 1–1,2 метра. Цветы ярко-зеленые, в форме колокольчиков. Они издают приятный аромат. В Бразилии и Чили он произрастает самостоятельно, без дополнительной культивации.

Табак «крылатый»

Многолетник, но есть и однолетние сорта. У него прямой толстый стебель, вырастающий до 60–70 сантиметров. Листья по размеру – средние, по форме – удлиненные. Цветочки – в форме трубочки, их длина может достигать 7–7,5 сантиметра. Бутоны представляют собой соединенный «веник». Цветение обычно происходит ночью, но сейчас есть специально выведенные сорта, которые цветут днем.

Табак «сандер» Это растение-гибрид было выведено путем скрещивания декоративного табака «крылатый» с диким табаком «форгета». Селекционерам удалось вывести этот сорт в 1903 году, с тех пор он активно применяется для украшения участков. Крупные цветы и листья, но без аромата, бывают ярко-красного или кипенно-белого цвета.

Перед тем как планировать высадку цветов на своем участке, следует учитывать размер взрослого растения и его особенности, чтобы получилась красивая картина, а растения не мешали друг другу. Поэтому нужно внимательно подбирать виды и сорта душистого табака.

Ирга: выращивание и уход | АППЯПМ

Материал подготовили:

Жбанова Ольга Владимировна
Исполнительный директор Ассоциации садоводов России (АППЯПМ), ведущий специалист АППЯПМ по ягодным культурам

Данилова Т.А.
Специалист АППЯПМ

С использованием материалов сайта yagodovodstvo.ru

Ирга: выращивание и уход

Качественные ягоды ирги

Ирга – это целая кладовая каротина, который наравне с аскорбиновой кислотой является одним из самых мощных антиоксидантов. Антиоксиданты укрепляют иммунитет человека, облегчают болезненные состояния, вызванные зависимостью от электромагнитных излучений, повышают устойчивость к инфекционным заболеваниям и стрессу, помогают избавиться от депрессивных состояний. Пектины выводят из организма соли тяжелых металлов, токсины, радионуклиды, понижают уровень холестерина, тем самым препятствуют возникновению серьезных патологий сосудов, и благотворно влияют на работу сердца.

В ирге содержится большое количество полезных веществ: пектины, моно — и дисахариды, органические кислоты (большей частью яблочная), В ягодах ирги содержатся витамины группы В, витамин С (аскорбиновая кислота), витамин Р, дубильные вещества, флавонолы, стерины, клетчатка, микроэлементы (свинец, кобальт, медь).

Пищевая ценность ирги неординарна, эта ягода практически не содержит ни белков, ни жиров, в ней представлена только углеводная составляющая (до 12 г на 100 г продукта). Энергетическая ценность ягоды также невысока, в 100 г ирги содержится всего 45 ккал.

Выращивание и уход

Игра канадская

Растение не очень требовательное к почвенным условиям. Для успешного выращивания наиболее подходят легкие супесчаные почвы. Ирга светолюбива, в затенении ее побеги сильно вытягиваются и хуже плодоносят. На солнечном участке отмечается высокая урожайность, а зрелые плоды становятся более сладкими. В молодом возрасте кусты ирги переносят небольшое затенение. Ирга колосистая отличается высокой морозостойкостью и может переносить морозы до -30 С. Из ирги колосистой получается высокая трудно проходимая живая изгородь, которая разрастается и уплотняется за счет обильной корневой поросли.

Самый лучший посадочный материал – это растения в возрасте 3 лет с развитой корневой системой. Для кустов нужна площадь питания до 2,5-4 м2. В ряду растения размещают на расстоянии 1,5-2 м друг от друга. В производственном питомнике используется схема посадки 4х2 м и 4х3 м. Для одиночных растений в возрасте до 3-5 лет выкапывают ямы диаметром 0,7 м и глубиной 0,5-0,7 м.

Уход за иргой

Обильное плодоношение ирги колосистой

Летом для ирги полезны жидкие подкормки, состоящие из аммиачной селитры (50 г/куст) или 5 л 10%-го раствора птичьего помета. Подкормка дается на ночь после дождя или после обиль¬ного полива.

Обрезку и формирование куста ирги проводят ранней весной, начиная с 3-4 летнего возраста. В этот период следует вырезать у самой поверхности почвы всю корневую поросль, кроме 1-2 побегов, расположенных наиболее близко к основанию куста. К омолаживающей обрезке ирги приступают, когда возраст куста достигает 8-10 лет. Сигналом к этому служит ослабление ежегодных приростов до 10 см. Сначала куст прореживают, удаляя все слабые, тонкие и чрезмерно вытянутые ветви, оставив только 10-15 самых крепких побегов. Затем нужно укоротить высокие побеги, срезав их на высоту 2-2,5 м. Места срезов обязательно смазать садовым варом. При таком заботливом уходе кустарник проживет до 70 лет.

В ЕС на фермах запретят выращивать и содержать животных в клетках

Представители Европейской комиссии заявили, что будут работать над новыми законами по поэтапному отказу от так называемого садкового животноводства (выращивания и содержания животных в клетках) на всей территории Европейского Союза.

Это произошло после того, как петиция «Прекратить век клетки» с требованием положить конец этой практике в ЕС, собрала более 1,4 миллиона подписей. Изменения коснутся кроликов, молодых кур, перепелов, уток и гусей. Фермеры получат поддержку в виде государственных субсидий, чтобы они могли модернизировать свое оборудование и пройти современное обучение. В ЕС также призывают к законодательному запрету на принудительное кормление уток и гусей для приготовления французского деликатеса фуа-гра.

«Животные — разумные существа, и мы несем моральную и социальную ответственность за то, чтобы условия содержания их на фермах отражали это», — сказала комиссар ЕС по здравоохранению Стелла Кириакидес. Новое законодательство будет предложено к 2023 году, а изменения будут постепенно вводиться к 2027 году, уточняет ВВС.

На кур-несушек, свиноматок и телят уже распространяются правила ЕС о клетках, а кур разрешено содержать в «хорошо оборудованных» клеточных отсеках. Они более просторны, чем так называемые батарейные отсеки, которые были запрещены в ЕС в 2012 году. Однако в 2015 году защитники прав животных обнаружили, что фермеры в нескольких странах сообщества все еще использовали их.

Заявление Еврокомиссии было сделано через несколько недель после того, как Европейский парламент также проголосовал в поддержку данного запрета. Отмечается, что существуют «серьезные опасения» по поводу условий содержания некоторых животных. В ЕС одни из самых высоких стандартов защиты животных в мире. Однако, согласно отчету организации End the Cage Age, 94 процента кроликов, выращиваемых на фермах в ЕС, по-прежнему содержатся в клетках, как 49 процентов кур и 85 процентов свиноматок.

Для принятия инициативы ее должны поддержать все 27 стран-членов ЕС, а также Европейский парламент. По данным Фонда Альберта Швейцера, Германия к 2025 году в одностороннем порядке намерена почти полностью запретить содержание кур в клетках. Это обязалась сделать и Чехия, а Австрия и Люксембург уже ввели этот запрет.

Выращивание культур в раннем голоцене и изменение ландшафта в Амазонии

  • 1.

    Larson, G. et al. Современные перспективы и будущее исследований приручения. Proc. Natl Acad. Sci. США 111 , 6139–6146 (2014).

    ADS CAS Статья Google ученый

  • 2.

    Зохари Д. и Хопф М. Одомашнивание растений в Старом Свете: происхождение и распространение культурных растений в Западной Азии, Европе и долине Нила (Oxford Univ.Press, 2000).

  • 3.

    Зедер М.А., Брэдли Д.Г., Смит Б.Д. и Эмшвиллер Э. Документирование одомашнивания: новые генетические и археологические парадигмы (Univ. California Press, 2006).

  • 4.

    Пиперно Д. Р. и Пирсолл Д. М. Истоки сельского хозяйства в низинных неотропиках (Academic, 1998).

  • 5.

    Пиперно Д. Р. Истоки выращивания и одомашнивания растений в тропиках Нового Света: модели, процессы и новые разработки. Curr. Антрополь . 52 , S453 – S470 (2011).

    Артикул Google ученый

  • 6.

    Клемент, К. Р., де Кристо-Араужу, М., д’Экенбрюгге, Г. К., Алвес Перейра, А. и Пикансо-Родригес, Д. Происхождение и одомашнивание местных амазонских культур. Diversity (Базель) 2 , 72–106 (2010).

    Артикул Google ученый

  • 7.

    Olsen, K. & Schaal, B. Микросателлитные вариации маниоки ( Manihot esculenta , Euphorbiaceae) и ее диких родственников: еще одно свидетельство происхождения одомашнивания в южной Амазонии. г. Дж. Бот . 88 , 131–142 (2001).

    CAS Статья Google ученый

  • 8.

    Sanjur, OI, Piperno, DR, Andres, TC и Wessel-Beaver, L. Филогенетические отношения между домашними и дикими видами Cucurbita (Cucurbitaceae), выведенные из митохондриального гена: последствия для эволюции сельскохозяйственных растений и районы происхождения. Proc. Natl Acad. Sci. США 99 , 535–540 (2002).

    ADS CAS Статья Google ученый

  • 9.

    Clement, C. R. et al. Приручение Амазонии до европейского завоевания. Proc. R. Soc. Лондон. В 282 , 20150813 (2015).

  • 10.

    Скальдаферро, М. А., Барбоза, Г. Э. и Акоста, М. С. История эволюции перца чили Capsicum baccatum L.(Solanaceae): одомашнивание в Южной Америке и естественная диверсификация в сезонно засушливых тропических лесах. Biol. J. Linn. Soc . 124 , 466–478 (2018).

    Артикул Google ученый

  • 11.

    Watling, J. et al. Прямые археологические свидетельства того, что Юго-Западная Амазония была центром раннего приручения растений и производства продуктов питания. PLoS ONE 13 , e0199868 (2018).

    Артикул Google ученый

  • 12.

    Lombardo, U. et al. Ранние и средние голоценовые занятия охотников-собирателей в Западной Амазонии: скрытые отложения ракушек. PLoS ONE 8 , e72746 (2013).

    ADS CAS Статья Google ученый

  • 13.

    Capriles, J. M. et al. Устойчивый тропический кормодобывание в тропиках от раннего до среднего голоцена в юго-западной Амазонии. Sci. Adv . 5 , eaav5449 (2019).

    ADS Статья Google ученый

  • 14.

    Hilbert, L. et al. Свидетельства одомашнивания риса в Северной и Южной Америке в середине голоцена. Nat. Ecol. Evol . 1 , 1693–1698 (2017).

    Артикул Google ученый

  • 15.

    Lombardo, U. et al. Изменение земного покрова в течение голоцена на юго-западе Амазонии, согласно архивам палеопаводков. Глобальная планета. Изменить 174 , 105–114 (2019).

    ADS Статья Google ученый

  • 16.

    Chandler-Ezell, K., Pearsall, DM & Zeidler, JA Фитолиты корней и клубней, а также крахмальные зерна документ маниока ( Manihot esculenta ) аррорута ( Maranta arundinacea ) и llerén Caline a (. Сайт Real Alto, Эквадор. Экон. Бот . 60 , 103–120 (2006).

    Артикул Google ученый

  • 17.

    Пиперно Д. Р. Фитолиты (АльтаМира Пресс, 2006).

  • 18.

    Моркоте-Риос, Г., Бернал, Р. и Раз, Л. Фитолиты как инструмент археоботанических, палеоботанических и палеоэкологических исследований в пальмах Амазонки. Бот. J. Linn. Soc . 182 , 348–360 (2016).

    Артикул Google ученый

  • 19.

    Ханельт П., Баттнер Р. и Мансфельд Р. Энциклопедия сельскохозяйственных и садовых культур Мансфельда (кроме декоративных) (Springer, 2001).

  • 20.

    Смит Б.Д. Первоначальное одомашнивание Cucurbita pepo в Америке 10 000 лет назад. Science 276 , 932–934 (1997).

    CAS Статья Google ученый

  • 21.

    Пиперно, Д. Р. и Стотерт, К. Э. Фитолитовые свидетельства раннего голоцена Cucurbita одомашнивания на юго-западе Эквадора. Наука 299 , 1054–1057 (2003).

    ADS CAS Статья Google ученый

  • 22.

    Диллехей, Т. Д. и Пиперно, Д. Р. в Кембриджская мировая предыстория (ред. Ренфрю, К. и Бан, П.) 970–985 (Cambridge Univ. Press, 2014).

  • 23.

    Kistler, L. et al. Мультипрокси-данные подчеркивают сложное эволюционное наследие кукурузы в Южной Америке. Наука 362 , 1309–1313 (2018).

    ADS CAS Статья Google ученый

  • 24.

    Rival, L. & McKey, D. Одомашнивание и разнообразие маниока ( Manihot esculenta Crantz ssp. esculenta , Euphorbiaceae). Curr. Антрополь . 49 , 1119–1128 (2008).

    Артикул Google ученый

  • 25.

    Родригес, Л., Ломбардо, У. и Вейт, Х. Проектирование доколумбовых возвышенных полей в Льянос-де-Моксос, Боливийская Амазонка: дифференциальная адаптация к местной среде? Дж.Археол. Sci. Репу . 17 , 366–378 (2018).

    Google ученый

  • 26.

    Макки, Д., Каваньяро, Т. Р., Клифф, Дж. И Глидоу, Р. Дж. С. Химическая экология в связанных человеческих и природных системах: люди, маниок, мультитрофические взаимодействия и глобальные изменения. Химиоэкология 20 , 109–133 (2010).

    CAS Статья Google ученый

  • 27.

    Джонс, М. в Эволюция диеты гомининов (ред. Хаблин, Дж. Дж. И Ричардс, М. П.) 171–180 (Springer, 2009).

  • 28.

    Асейтуно, Ф. Дж. И Лоайза, Н. Истоки и раннее развитие производства пищевых растений и земледелия в тропических лесах Колумбии. J. Anthropol. Археол . 49 , 161–172 (2018).

    Артикул Google ученый

  • 29.

    Смит Б. Д. Общие закономерности создания ниши и управления ресурсами «диких» растений и животных в небольших доиндустриальных обществах. Фил. Пер. R. Soc. Лондон. В 366 , 836–848 (2011).

    Артикул Google ученый

  • 30.

    Lombardo, U., May, J.-H. И Вейт, Х. Речная активность в середине и позднем голоцене, лежащая в основе доколумбовой социальной сложности в юго-западной части бассейна Амазонки. Голоцен 22 , 1035–1045 (2012).

    ADS Статья Google ученый

  • 31.

    Мэннинг, А. Д., Фишер, Дж. И Линденмайер, Д. Б. Разрозненные деревья являются краеугольными камнями и важны для сохранения. Biol. Консерв . 132 , 311–321 (2006).

    Артикул Google ученый

  • 32.

    Tews, J. et al. Разнообразие видов животных, обусловленное неоднородностью / разнообразием местообитаний: важность краеугольных структур. Дж. Биогеогр . 31 , 79–92 (2004).

    Артикул Google ученый

  • 33.

    Беркунский И. и др. Оценка использования лесных островов видами попугаев в неотропической саванне. Птичий заповедник. Ecol. 10 , 11 (2015).

    Google ученый

  • 34.

    Prümers, H. & Jaimes Betancourt, C. 100 años devestigación arqueológica en los Llanos de Mojos. Arqueoantropológicas 4 , 11–53 (2014).

    Google ученый

  • 35.

    Джанкейра, А. Б., Шепард, Г. Х. и Клемент, К. Р. Дж. Э. Б. Вторичные леса на антропогенных почвах средней реки Мадейры: оценка, местные знания и одомашнивание ландшафта в Бразильской Амазонии. Экон. Бот . 65 , 85–99 (2011).

    CAS Статья Google ученый

  • 36.

    Ломбардо, У., Канал-Биби, Э. и Вейт, Х. Эко-археологические регионы в боливийской Амазонии: связь доколумбовых земляных работ и разнообразия окружающей среды. Геогр. Helv . 66 , 173–182 (2011).

    Артикул Google ученый

  • 37.

    Лангстрот Плоткин Р. Биогеография Льянос-де-Моксос: природные и антропогенные детерминанты. Геогр. Helv . 66 , 183–192 (2011).

    Артикул Google ученый

  • 38.

    Ломбардо, У., Денье, С. и Вейт, Х. Свойства почвы и доколумбовые поселения в районе монументальных курганов Льянос-де-Моксос, Боливийская Амазонка. Почва (Геттинген) 1 , 65–81 (2015).

    CAS Статья Google ученый

  • 39.

    Родригес, Л., Ломбардо, У., Канал Биби, Э. и Вейт, Х. Увязка свойств почвы и доколумбовых сельскохозяйственных стратегий в низменностях Боливии: случай приподнятых полей в Эксальтасьоне. Quat. Инт . 437 , 143–155 (2017).

    Артикул Google ученый

  • 40.

    Бойшадера, Дж., Поч, Р. М., Гарсия-Гонсалес, М. Т. и Вискайно, К. Гидроморфные и связанные с глиной процессы в почвах Льянос-де-Моксос (северная Боливия). Катена 54 , 403–424 (2003).

    CAS Статья Google ученый

  • 41.

    Hanagarth, W. Acerca de la Geoecología de las Sabanas del Beni en el Noreste de Bolivia (Instituto de Ecología, 1993).

  • 42.

    Ломбардо, У., Руис-Перес, Дж. И Маделла, М. Обработка ультразвуком повышает эффективность, действенность и безопасность экстракции фитолитов. Rev. Palaeobot. Palynol . 235 , 1–5 (2016).

    Артикул Google ученый

  • 43.

    Пиперно, Д. Р. Идентификация сельскохозяйственных культур с фитолитами (и крахмальными зернами) в Центральной и Южной Америке: обзор и обновление данных. Quat. Инт . 193 , 146–159 (2009).

    Артикул Google ученый

  • 44.

    Ириарте, Дж. Оценка возможности идентификации кукурузы посредством анализа крестообразных размеров и трехмерной морфологии фитолитов на лугах на юго-востоке Южной Америки. J. Archaeol. Sci . 30 , 1085–1094 (2003).

    Артикул Google ученый

  • 45.

    Watling, J. et al.Дифференциация неотропических экосистем современными сообществами почвенных фитолитов и ее значение для палеоэкологических и археологических реконструкций II: леса Юго-Западной Амазонки. Rev. Palaeobot. Palynol . 226 , 30–43 (2016).

    Артикул Google ученый

  • 46.

    Dickau, R. et al. Дифференциация неотропических экосистем современными сообществами почвенных фитолитов и ее значение для палеоэкологических и археологических реконструкций. Rev. Palaeobot. Palynol . 193 , 15–37 (2013).

    Артикул Google ученый

  • 47.

    Hogg, A. G. et al. SHCal13 Калибровка Южного полушария, 0–50 000 лет назад. Радиоуглерод 55 , 1889–1903 (2013).

    CAS Статья Google ученый

  • 48.

    Бронк Рэмси, К. Байесовский анализ радиоуглеродных дат. Радиоуглерод 51 , 337–360 (2009).

    Артикул Google ученый

  • 49.

    Piperno, D. R. et al. Фитолиты Cucurbita и других неотропических тыквенных и их появление на ранних археологических памятниках в низинных тропиках Америки. J. Arch. Sci . 27 , 193–208 (2000).

    Артикул Google ученый

  • Высоко параллельное выращивание капель и определение приоритетов продуцентов антибиотиков из естественных микробных сообществ

    Существенные изменения:

    1) Представленное микробное разнообразие основано на секвенировании ампликона 16S образцов после 28 дней инкубации. Это не показывает, как эта система влияет на выращивание быстрорастущих и медленнорастущих видов. Быстрорастущим видам может потребоваться всего меньше дней, чтобы вырасти и раньше достигли стационарной фазы. В то время как медленнорастущие виды могли быть предпочтительнее в этой системе, потому что им требуется больше времени, чтобы истощить питательные вещества в каплях. Когда капли используются для скрининга, быстрорастущие производители могут не быть метаболически активными по сравнению с медленными. Возможно, что метаболитов, продуцируемых быстрыми выращиванием, будет достаточно для подавления рассматриваемого патогена.Однако авторы также заявляют, что капли обеспечивают диффузию метаболитов (Обсуждение). В этом случае метаболиты быстрорастущих бактерий могли быть потеряны к моменту проведения скрининга на антибиотики. Чтобы прояснить это, необходимы дополнительные данные. Могли ли авторы изобразить капли с течением времени? Например, еженедельные данные по кинетике роста? Есть ли у авторов информация о секвенировании сообществ капель с течением времени? Если еженедельные пробы секвенируются, это должно прояснить влияние системы на видовое разнообразие.

    Мы знаем, что наша система может отдавать предпочтение медленнорастущим видам. Мы даже хотели сделать это как средство устранения репликации. Быстрорастущие виды, как правило, легко культивируются и подвергались тщательному отбору в ходе стандартных отборов натуральных продуктов. Поскольку цель нашего выращивания и скрининга миниатюрных капель заключалась в том, чтобы сделать новую подгруппу естественного бактериального разнообразия доступной для скрининга, мы специально решили выбрать такие условия, как низкое количество питательных веществ и длительное время инкубации, которые могут помочь культивировать менее известные виды.

    Чтобы проследить соотношение быстрорастущих и медленных производителей, мы контролировали рост бактерий с течением времени в каплях под микроскопом, определяя относительное количество капель с бактериальными колониями внутри, как показано на Рисунке 1 — дополнении к рисунку 2. На Рисунке 1B показан пример для изображения, полученные в процессе подсчета.

    Быстрорастущие виды по-прежнему будут обнаружены с помощью анализа 16S через 28 дней, если они полностью не лизируются, что обычно маловероятно. Мы провели секвенирование через 28 дней, чтобы получить представление обо всем видовом разнообразии, которое растет капельно, без различия между быстрыми и медленными выращивающими.Наша цель состояла в том, чтобы впервые сравнить общий результат культивирования, полученный в каплях и на чашках с агаром. Действительно, для научного интереса было бы разумно секвенировать еженедельные подвыборки, чтобы отличать быстрых от медленных производителей, но это не входило в нашу задачу.

    Мы согласны с тем, что некоторые быстрорастущие растения могут больше не проявлять метаболическую активность в каплях через 28 дней и, как следствие, не могут быть успешно изолированы и масштабированы, даже если они могли производить противомикробные вещества.Однако, как только что было подчеркнуто, высока вероятность того, что быстрорастущие растения выращивались и проверялись и раньше. Для будущей работы мы даже обсуждаем возможность отмены выбора для быстрорастущих производителей с помощью сортировки по каплям на основе изображений в течение первой недели, чтобы еще больше снизить вероятность повторного открытия натуральных продуктов. Кроме того, даже если быстрые производители больше не жизнеспособны, мы все равно выиграем от информации о том, что репортерные клетки были ингибированы накопленными метаболитами, в сочетании с генетической информацией штаммов-продуцентов (аналогично культурам, которые мы вскоре снова потеряли. после изоляции).Генетическая информация для метаболически неактивных клеток или видов может быть получена путем сортировки капель с ингибированными репортерами и внесения отдельных капель в лунки для геномики отдельных клеток, даже если их нельзя культивировать вне капель (больше).

    Мы осознаем упомянутый риск того, что активные метаболиты могут не привести к ингибированию, потому что утечка метаболитов через границы капель может слишком сильно разбавить концентрацию, и этот риск, конечно, увеличивается со временем. С другой стороны, этот риск выше для быстрых производителей, чем для медленных (т.е. не так актуален для группы интересов). Однако граница капли также не так проницаема для такого количества метаболитов, как мы могли бы представить. Чтобы прояснить этот вопрос, мы включили в рукопись дополнительную информацию (см. Ниже). Чем более гидрофильный метаболит, тем менее вероятно, что он переходит из водной в масляную фазу. Это означает, что у нас может быть предвзятость в отношении гидрофильных антибиотиков в нашем скрининге, что может даже быть сильной стороной, поскольку внешняя мембрана грамотрицательных бактерий делает их устойчивыми к ряду гидрофобных антимикробных препаратов.

    В заключение, мы согласны с тем, что наш скрининг является предвзятым для медленных производителей. Мы намеревались сделать это, предполагая найти более редкие и ранее не проверенные виды среди медленно выращивающих. Что касается характеристики результата культивирования, мы намеревались описать выращивание в каплях по сравнению со стандартным культивированием в чашках, не разделяя на медленных и быстрых производителей.

    Чтобы повысить информативность рукописи по этой теме и прояснить эти моменты, мы включили следующие строки:

    «Мы также специально выбрали такие условия, как низкое количество питательных веществ и длительное время инкубации, которые могут способствовать росту и метаболической активности медленно растущих видов по сравнению с быстрорастущими видами.[…] В будущей работе мы даже планируем активную отмену выбора для быстрорастущих производителей с помощью сортировки по каплям на основе изображений в течение первой недели, чтобы еще больше снизить вероятность повторного открытия натуральных продуктов ».

    «Примечательно, что граница капель, стабилизированная поверхностно-активным веществом, хотя и образует механический барьер для предотвращения перекрестного заражения клеток, не устраняет полностью молекулярный транспорт для всех типов молекул. […] Межкапельный транспорт молекул также может дать преимущество на этапе культивирования.Разрешение общения между видами может в некоторой степени сохранить стимулирующее рост влияние многовидовых сообществ ».

    2) Какая часть видов в капле жизнеспособна после 28 дней инкубации. Зная это, важно знать, происходит ли подавление патогена исключительно из-за прямой бактериальной конкуренции, метаболитов или их комбинации. Простым экспериментом, который может ответить на этот вопрос, может быть измерение АТФ, производимого растущими видами в каплях.

    Чтобы избежать ингибирования из-за конкуренции / истощения питательных веществ, мы добавили репортерные штаммы в питательной среде к каплям, как указано в Обсуждении. При создании репортерного анализа мы убедились, что репортерные клетки приносят с собой достаточно питательных веществ для роста и дают сильный сигнал, когда штамм, не являющийся продуцентом, был инкапсулирован в каплю раньше и потреблял питательные вещества вместе. Система действительно может обнаружить другие способы прямой конкуренции между бактериями, но, возможно, стоит изучить их дополнительно.Для подтверждения ингибирования пул полученных изолятов можно снова протестировать с репортерным штаммом в 96-луночных планшетах.

    Для наших капель мы в настоящее время не можем считывать производство АТФ и наличие клеток одновременно надежно и с высокой пропускной способностью. Нам понадобится высокопроизводительный метод для обнаружения присутствия бактерий независимо от метаболических маркеров, потому что нас будет интересовать соотношение метаболически активных клеток (продуцирующих АТФ) ко всем клеткам (включая метаболически неактивные клетки).Общие методы окрашивания клеток, такие как мембранные красители, обычно не дают достаточно интенсивных считывающих сигналов для присущей им высокой пропускной способности капель. Надежным методом, совместимым с нашей капельной системой, был бы автоматический анализ изображений для определения бактериальных колоний без маркеров. Из-за одновременного присутствия частиц почвы в каплях мы еще не смогли разработать алгоритм анализа изображений, который бы успешно различал клетки и частицы почвы. Мы работаем над таким анализом изображений для последующих экспериментов.

    3) Сильной стороной системы является то, что культивируемые капли могут использоваться для скрининга видов, продуцирующих антибиотики. Этот подход, возможно, можно было бы использовать также для скрининга продукции других метаболитов. Однако утечка метаболитов, продуцируемых выращиваемыми видами, в метаболиты является недостатком на этапе скрининга. Можно ли решить эту проблему путем сортировки капель на другом балкере? Это должно удалить диффузные метаболиты и выявить ингибирование живыми бактериями по сравнению снакопленные метаболиты в каплях. Могут ли авторы это прокомментировать?

    a) Утечка метаболитов не так обширна, как предполагается здесь. Только достаточно гидрофобные или очень маленькие молекулы будут попадать в масляную фазу. Мы добавили информацию об этом в существующий абзац:

    «Примечательно, что граница капель, стабилизированная поверхностно-активным веществом, хотя и образует механический барьер для предотвращения перекрестного заражения клеток, не устраняет полностью молекулярный транспорт для всех типов молекул. […] Разрешение общения между видами может в некоторой степени сохранить стимулирующее рост влияние многовидовых сообществ ».

    b) Если метаболиты просачиваются, они протекают постоянно в соответствии с их коэффициентом распределения для межфазной фазы вода / масло. Даже после переноса капель в другой сосуд для хранения и продолжения инкубации (низкий) риск перекрестного заражения капель останется.

    c) Масло, окружающее капли, работает как мостик для утечки метаболитов при переходе к другим каплям.Он непрерывно прокачивается через капли в инкубационном устройстве, что приводит к постоянному перемешиванию капель. Сравнительно большое количество масла, используемого во время инкубации (~ 7 мл масла против ~ 200 мкл одной капли или, например, 1,8 мкл капель, если предположить, что 1 капля из 1000 содержит высокий продуцент) разбавляет любой метаболит и делает маловероятным что у просачивающихся метаболитов есть шанс накапливаться в случайной другой капле до минимальной ингибирующей концентрации, особенно потому, что капли постоянно меняют свои соседние капли. Теоретически было бы также возможно регулярно полностью заменять масляную фазу полностью во время инкубации, однако из-за сильного внутреннего эффекта разбавления мы не думаем, что это необходимо. Кроме того, наша плотность инокуляции для достижения инокуляции отдельных клеток приводит к тому, что ~ 80% капель остаются пустыми, что снова снижает вероятность любых эффективных уровней межкапельного переноса. Таким образом, мы предполагаем, что риск пропуска метаболитов из-за утечки намного выше, чем ложноположительный выбор капель с ингибированным репортером из-за накопления метаболитов вдали от продуцента.Мы суммировали эти мысли в рукописи (см. Копию выше).

    4) Образцы почвы после культивирования в виде капель помещают на твердую агаровую среду для обеспечения роста и характеристики. Учитывая, что некоторые из микроорганизмов, которые выросли в каплях, вероятно, неспособны расти на твердой среде, возможно, было бы полезно высеять капли в микролунки, содержащие жидкую среду для восстановления, для улучшения восстановления и последующей характеристики штаммов. Это было сделано? Если нет, пожалуйста, вставьте несколько комментариев / дискуссий по поводу культивирования твердых веществ и жидкостей.

    Мы согласны с тем, что осаждение капель в микролунках с жидкой средой является благоприятным, и мы над этим работаем. Однако техническая установка более сложна и требует дополнительной оптимизации, чтобы гарантировать, что только одна капля откладывается в скважине. Мы расширили уже существующий абзац в Обсуждении, чтобы сделать его более понятным.

    «Тем не менее, общее таксономическое распределение, обнаруженное после культивирования в каплях, не может быть восстановлено с помощью нашей процедуры депозиционирования и выделения капель на чашках с агаром.[…] Следовательно, в настоящее время мы разрабатываем другие стратегии масштабирования до жидкой культуры, такие как осаждение капель в лунках микротитровального планшета »

    Мы также включили еще одну идею для одомашнивания штаммов в жидкой среде:

    «Кроме того, у нас есть выделенные штаммы после одного цикла инкубации в виде капель, но в качестве альтернативы эмульсия может быть разрушена в контролируемых условиях, и можно начать культивирование новой капли из объединенной суспензии клеток. Путем прохождения сообщества несколько раз через культивирование в каплях размножающиеся организмы обогащаются, и вероятность одомашнивания штамма увеличивается [Bollmann, Lewis and Epstein, 2007].”

    https://doi.org/10.7554/eLife.64774.sa2

    Происхождение культивирования и проторосняков задолго до неолита

    Abstract

    В настоящее время сорняки присутствуют во многих экосистемах по всему миру. Хотя начало их эволюции в значительной степени неизвестно, исследователи предположили, что они развивались в тандеме с земледелием с момента появления сельскохозяйственных местообитаний около 12000 лет назад. Эти быстро развивающиеся растения вторглись в нарушенные человеком районы и процветали в новой среде обитания.Здесь мы представляем беспрецедентные новые данные о присутствии «проторосников» и небольших пробных посевов в Охало II, оседлом лагере охотников-собирателей возрастом 23 000 лет на берегу Галилейского моря в Израиле. Мы исследовали остатки растений, извлеченные на этом участке (около 150 000 экземпляров), уделяя особое внимание поиску свидетельств выращивания растений людьми Охало II и наличия видов сорняков. Комплекс растений, богатый археоботаниками, демонстрирует, что люди собирают более 140 видов растений и готовят пищу путем измельчения дикорастущей пшеницы и ячменя.Среди них мы идентифицировали 13 хорошо известных современных сорняков, смешанных с многочисленными семенами дикого эммера, ячменя и овса. Эта коллекция представляет собой самые ранние свидетельства нарушенной человеком окружающей среды — по крайней мере, за 11 тысячелетий до начала земледелия — которая обеспечила условия для развития «проторосняков», что является предпосылкой для эволюции сорняков. Наконец, мы предполагаем, что их присутствие указывает на самую раннюю небольшую попытку выращивания диких злаков, обнаруженную в археологических записях.

    Образец цитирования: Снир А., Надель Д., Громан-Ярославский И., Меламед Ю., Штернберг М., Бар-Йосеф О. и др.(2015) Происхождение культивирования и проторосняков, задолго до неолита. PLoS ONE 10 (7): e0131422. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0131422

    Редактор: Сергей Волис, Институт ботаники Куньмин, КИТАЙ

    Поступила: 24 февраля 2015 г .; Одобрена: 1 июня 2015 г .; Опубликован: 22 июля 2015 г.

    Авторские права: © 2015 Snir et al. Это статья в открытом доступе, распространяемая в соответствии с условиями лицензии Creative Commons Attribution License, которая разрешает неограниченное использование, распространение и воспроизведение на любом носителе при условии указания автора и источника

    Доступность данных: Авторы подтверждают, что все данные, лежащие в основе выводов, полностью доступны без ограничений.Все соответствующие данные находятся в рукописи и ее файлах с вспомогательной информацией.

    Финансирование: Эта работа была поддержана индивидуальным исследовательским грантом Израильского научного фонда (http://www.isf.org.il/), грант № 711/08 для EW. Финансирующие организации не играли никакой роли в дизайне исследования, сборе и анализе данных, принятии решения о публикации или подготовке рукописи.

    Конкурирующие интересы: Авторы заявили, что никаких конкурирующих интересов не существует.

    Введение

    Поиск конкретных свидетельств первого появления сорняков около 12 000 лет назад, когда в Леванте было начато планомерное систематическое культивирование, должен опираться на сообщества доисторических археоботанических растений [1–3].Археологические данные демонстрируют, что до-неолитические человеческие сообщества были охотниками-собирателями на протяжении тысячелетий, когда радикальное развитие произошло по всей Евразии в начале голоцена, 11700/500 кал. В течение следующих нескольких тысячелетий общества собирателей по всему Плодородному полумесяцу начали выращивать, а также пасти, ухаживать за козами, овцами, свиньями и крупным рогатым скотом [2,4]. В конце концов, развитие первоначальной сельскохозяйственной системы привело к «синдрому одомашнивания» как растений, так и животных.Создание долгосрочных сельскохозяйственных поселений привело к увеличению населения, что впоследствии привело к экспансии людей на запад и восток [5].

    Исследования периода палеолита уже показали, что люди вызвали значительные изменения в окружающей их среде задолго до неолитической революции. Этот процесс, который интересовал ученых с начала 1950-х годов [6], в настоящее время называется «конструированием ниши» [7–10]. Люди поджигали растительность, охотились и ловили предпочтительные виды млекопитающих, птиц, рептилий и рыб, вырубали деревья для строительства и создания множества предметов, а также создавали свалки в своих лагерях и вокруг них.Позже, с началом успешного целенаправленного возделывания, охотники-собиратели расчищали поля возле своих жилищ для посадки. Интенсивное нарушение этих сред привело к размножению синантропных растений. Эти виды растений, как однолетние, так и многолетние, обладают функциональными и адаптивными особенностями, которые позволяют им противостоять нарушенным средам обитания и повышать свою биологическую пригодность в естественных растительных сообществах, измененных естественными или антропогенными силами [3]. Благодаря быстрому поглощению воды (особенно в местах обитания с ограниченными водными ресурсами), высокой скорости роста, способности к рассредоточению и способности процветать в районах с измененными питательными ресурсами почвы синантропные виды (позже названные сорняками) часто вторгаются в вновь образованные места обитания [11,12 ].Они смогли быстро создать обширные популяции, особенно с расширением земледелия, вторгаясь в возделываемые поля и вызывая снижение урожайности сельскохозяйственных культур.

    Хотя современные агрономы и археологи обычно относятся к сорнякам как к растениям, присутствующим в полевых культурах, этот термин требует тщательного определения, поскольку его использование разнообразно в обеих областях исследований. Здесь сорняки определяются как растения, которые нарушают или изменяют функционирование и состав природных экосистем и окружающей среды, измененной человеком.В большинстве случаев на Ближнем Востоке и в Европе они негативно влияют на деятельность человека и как таковые нежелательны. «Протосорняки» определяются как первые дикие растения, которые проникли в места обитания, затронутые человеком, и начали расти в них, что впоследствии привело к развитию сорняков [13].

    Поскольку сорняки процветают на возделываемых полях и нарушенных почвах [14], наличие значимых сорняков в археоботанических сообществах, извлеченных из неолитических стоянок и поселений более позднего возраста, широко считается показателем систематического культивирования [15–20].Как правило, сорняки являются полезными экологическими маркерами только , если они идентифицированы на уровне видов. Несомненно, в родах, включающих несколько видов, каждый вид может иметь совершенно различную экологическую сигнатуру и не может служить заменителем сельскохозяйственной деятельности [21]. Уникальные анаэробные условия, которые преобладали на Охало II, позволили обеспечить высокий уровень сохранности образцов, что позволило идентифицировать их на уровне видов.

    До сих пор географическое происхождение некоторых современных сорняков Юго-Западной Азии было неизвестно.В этой статье мы представляем археоботанические доказательства, указывающие на то, что некоторые из этих видов изначально присутствовали в окружающей среде, затронутой человеком, в качестве местных диких растений в течение конечного плейстоцена. Позже, с установлением систематического земледелия, они превратились в сорняки или функционировали как сорняки без дальнейшей эволюции. Мы называем первую стадию этого взаимодействия человека и растения «стадией прото-сорняков ».

    Материалы и методы

    Охало II находится на юго-западном берегу Галилейского моря (озеро Кинерет), Израиль.Это место было заселено во время последнего ледникового максимума (LGM) около 23 000 лет назад, а затем было затоплено [22]. Он был обнаружен в 1989 году, когда уровень воды в озере резко упал после нескольких лет засухи и интенсивной откачки воды. Затопленный участок раскапывался в течение шести сезонов с 1989–1991 и 1998–2001 годов (разрешения на раскопки: 1989: L. 1634; 1990: L. 1724; 1991: 93/91; 1998: 160/98; 1999: G-61 / 99; 2000: G-20/2000; 2001: G-73/2001, выпущено Израильским управлением древностей), а открытые хижины были исключительно хорошо сохранившимися.Во время раскопок были обнаружены остатки шести кустарниковых хижин, а также несколько очагов (рис. 1). Четыре кустарниковые хижины были полностью раскопаны, а в двух были отобраны только образцы. Все хижины имели чашеобразное поперечное сечение с выкопанным полом ниже уровня земли. Четыре хижины имели овальную форму, а две — изогнутые.

    Виды растений, которые использовались для строительства хижин, были идентифицированы в Brush Hut 1; он был построен из толстых ветвей Tamarix (тамариск), Salix (ива) и Quercus ithaburensis (Mt.Дуб Табор), покрытый более мелкими ветвями других древесных пород, таких как Atriplex / Seidlitzia (orach / seidlitzia) и Prosopis (мескит), а также листьями и травами. В тщательно отобранных и тщательно отобранных залежах, найденных в этих хижинах, особенно богат растительный комплекс . Было собрано 150 000 семян и плодов. Различные исследования этого комплекса уже опубликованы [22–26]. Кроме того, на полу хижин были обнаружены разнообразные кремневые и молотые каменные орудия, останки фауны (рыб, млекопитающих, птиц, грызунов, рептилий и моллюсков), бусы, кости и деревянные предметы.Рядом с одной из хижин обнаружена могила взрослого мужчины [27–40].

    Результаты и обсуждение

    Городище Охало II и его находки

    Выдающаяся сохранность различных комплексов обсуждалась в нескольких публикациях, которые предполагают, что подъем уровня озера произошел сразу после того, как этот лагерь был оставлен и запечатан на тысячи лет [27,33,41,42]. Первоначально растительный материал сохранялся путем обугливания и осаждения ила, запечатывающего их в условиях низкого содержания кислорода под водой озера, что является идеальным местом для сохранения органического материала [24,43].

    Более одной трети этого богатого комплекса семян и плодов принадлежит семейству злаков (Poaceae), включая дикую пшеницу эммер, дикий ячмень и дикий овес ( Triticum dicoccoides , Hordeum spontaneum , Avena barbata / стерилис ). Однозначные доказательства того, что эти зерна были переработаны для потребления, предоставлены ( и ) размольной плитой, установленной на полу Brush Hut 1, из которой были извлечены гранулы дикого злакового крахмала, и ( ii ) узорчатым распределением этих видов. ‘семена найдены вокруг шлифовальной плиты [23,24,44].

    Охало II функционировало как круглогодичное поселение, о чем свидетельствуют останки перелетных птиц, которые, как известно, посещали регион в разные сезоны, и время созревания идентифицированных остатков растений [23,38] (S1 Рис). Этот вывод подтверждается самым ранним появлением на этом участке комменсальных видов, таких как домовая мышь ( Mus musculus ) и крыса ( Rattus rattus ) [33].

    Растения и остатки фауны демонстрируют, что жители Охало II практиковали широкий спектр эксплуатации однолетних растений (таблица 1) и птиц [45].Некоторые из растений являются прародителями одомашненных видов сельскохозяйственных культур, таких как пшеница, ячмень, горох, чечевица, миндаль, инжир, виноград и оливки. Таким образом, примерно за 11000 лет до того, что считалось началом земледелия, рацион людей в значительной степени зависел от того же сорта растений, которые в конечном итоге стали одомашненными.

    Протосорняки

    Среди ок. . 150 000 идентифицированных обугленных семян и плодов, 15 726 (10,5%) из этих семян относятся к 13 существующим видам сорняков (Таблица 2).Их высокая частота отражает их обычное присутствие в качестве проторосников в непосредственной близости от участка. Почти все изученные семена протосорняков (93,2%) принадлежат к двум важным видам современных сорняков на полях: кукурузоуборочные ( Galium tricornutum ) и десять зерен дарнеля (ср. Lolium temulentum ) (S2 Рис. ). До сих пор первоначальная среда обитания этих растений была неизвестна, поскольку они редки за пределами сегетальных сред в Леванте [14]. Таким образом, Охало II дает старейшие и наиболее четкие из известных указаний на их происхождение, а также на время их проникновения в созданные руками человека ниши [7–9,46].Кроме того, возможно, что мы не смогли идентифицировать зерно дарнели на 100% (отсюда и около), потому что эти зерна морфологически ближе к его неизвестному дикому типу, чем к текущему типу сорняков. Четыре вида сорняков, обнаруженных на участке: Chenopodium album , Malva parviflora , Notobasis syriaca и Silybum marianum , являются обычными текущими сорняками в регионе, которые обычно встречаются на нарушенных территориях или на свалках, хотя некоторые из них части съедобны [14,47–52].Из-за присутствия съедобных растений в этой последней группе они могли быть собраны для потребления в дикой природе или на местной свалке, где они росли.

    Присутствие такого большого разнообразия и огромного количества протосорняков, особенно Galium tricornutum , может указывать на то, что эти виды росли вместе с зерновыми культурами, собранными для потребления (дикий ячмень, дикая пшеница и дикий овес). Поскольку эти злаки и сорняки в настоящее время произрастают в антропогенной нише диких и возделываемых полей в долине реки Иордан и в свете их общего присутствия в Охало II (Таблица 2), мы должны рассмотреть две альтернативные гипотезы.Во-первых, их собирали в дикой природе, а во-вторых, они выращивали на пробных площадях, поскольку местные жители занимались мелкомасштабным, элементарным выращиванием зерновых.

    Кроме того, найдены такие сорняки, как Ch . альбом , М . парвифлора , N . syriaca и S . marianum (Таблица 2) является самым ранним ботаническим указанием на нарушенную среду в Леванте как на свалку, где размножались нитрофильные протосорняки [8].Эта измененная среда способствовала появлению и росту этих видов, которые процветали в нарушенной среде в непосредственной близости от постоянного лагеря Охало II.

    Здесь мы отмечаем, что одомашненные злаки обычно идентифицируются по типу рубцов от расчленения позвоночника; Рубцы гладкой дисартикуляции рассматриваются как основной диагностический элемент для идентификации диких форм, тогда как грубые рубцы дисартикуляции указывают на домашнюю форму [2].Присутствие> 10% домашнего типа в данном археоботаническом комплексе считается показателем для одомашнивания [53,54]. На участке Охало II было обнаружено 320 рахисов дикого ячменя, из которых 36% имеют рубцы домашнего типа (рис. 3), а также 148 рахисов дикорастущей пшеницы, 25% из которых являются рубцами домашнего типа. Важно отметить, что относительная ширина рахизов указывает на то, что большинство рубцов домашнего типа не происходит из нижней части уха [54]. Традиционно подобные находки считались одомашненными.Однако мы не претендуем на такой статус. Сначала колосья диких злаков созревают постепенно, при этом созревает верхний колоск и опадает на землю [55]. Во-вторых, созревание колосов в диких насаждениях настолько неравномерно, что в любой момент времени только некоторые из колосьев желтые (полностью спелые), в то время как другие зеленые (незрелые) или находятся на промежуточной стадии зелено-желтого цвета [56] (Рис. 2). ). Однако полевые исследования, проведенные в популяциях дикого ячменя по всему Израилю, показали, что собранные зеленые или зелено-желтые колосья имеют тенденцию расчленяться и показывать те же чистые рубцы дикого типа, когда они высыхают, а не грубые рубцы домашнего типа [54,57].Таким образом, этот высокий процент рубцов домашнего типа в комплексе Охало II имеет важное значение для нашей реконструкции обычаев обитателей стоянки.

    Рис. 2. Ячмень дикий ( Hordeum spontaneum ).

    (A) Поле дикого ячменя в парке Якум (32 ° 14 ′ 50,28 ″ северной широты, 34 ° 50 ′ 33 ″ восточной долготы, 18 марта 2013 г.). Он растет здесь вместе с другими видами, такими как Galium aparine , Chrysanthemum coronarium , Notobasis syriaca и Anthemis sp.(B) На том же поле виден дикий ячмень на трех стадиях созревания — зеленом, желто-зеленом и желтом.

    https://doi.org/10.1371/journal.pone.0131422.g002

    Уборка зелено-желтых зерновых полей на Охало II подтверждается исследованием блестящих кремневых лезвий, найденных на этом участке. В настоящее время изучаются пять орудий, один из которых представлен здесь (рис. 4). Согласно экспериментальным результатам, которые мы провели на диких зерновых насаждениях, был сделан вывод, что полировка от износа, наблюдаемая на острых краях, была получена при разрезании зелено-желтых стеблей злаков.Характеристики микроскопических следов напоминают следы на лезвиях натуфийских серпов, характеризующиеся относительно тонкой полосой яркого и гладкого блеска, что указывает на непродолжительное уборочное действие [58–61]. Глянцевое лезвие (рис. 4) также имеет следы рукояти на противоположном крае, в том числе полосы полировки и закругления приподнятых поверхностей, типичных для кремневого орудия, расположенного в продольном направлении, что указывает на то, что такое лезвие было частью составного инструмента, возможно, одного из нескольких лезвия в длинной ручке.Хотя серповидные лезвия очень редки на донафийских стоянках, они служат четким доказательством использования техник сбора урожая с использованием заранее спланированных композитных инструментов.

    Рис. 4. Лезвие серпа из Охало II.

    (A) Макрограф серповидного лезвия. (B) Микрофотография, показывающая полироль для износа, полученный при уборке зерновых, наблюдаемый вдоль острого края лезвия (исходное увеличение 200x). (C) Микрофотография, показывающая износ стержня, включая полосы полировки, связанные с закруглением, наблюдаемые вдоль противоположного края (исходное увеличение 100x).

    https://doi.org/10.1371/journal.pone.0131422.g004

    Другими словами, эти серповидные лезвия указывают на то, что люди Охало II собирали злаки таким же способом, который ранее был известен только с натуфийского периода, примерно 10 тысячелетий спустя. .

    Выводы

    Мы предполагаем, что археоботанические останки Охало II указывают на то, что местные жители практиковали мелкомасштабное культивирование, без каких-либо доказательств того, что это будет продолжаться в последующий период. Подобные неудавшиеся испытания новых методов известны из истории технологий, но идеи остаются в основном в той же группе населения [62].Есть несколько доказательств, подтверждающих это предположение: (i) большое количество съедобных трав, дикой пшеницы, дикого ячменя и дикого овса; (ii) большое количество проторосняков; (iii) обычное присутствие шрамов от расслоения домашнего типа, намного превышающее нормальное представление в диких популяциях, и (iv) наличие самых ранних серповидных лезвий, указывающих на запланированный сбор зерновых. Действительно, важно отметить, что мы не претендуем на статус одомашненных пшеницы и ячменя Охало II.Мы предполагаем, что такое опытное выращивание могло быть причиной значительного представительства рахисов домашнего типа. В свою очередь, рахис домашнего типа, вероятно, указывает на некоторые эволюционные изменения, аналогичные процессу, который произошел примерно десять тысячелетий спустя, когда пшеница и ячмень стали полностью одомашненными. Однако эти изменения, вероятно, исчезли после непродолжительного культивирования Охало II, хотя археоботанические данные (и серповидные лезвия) по-прежнему отсутствуют на следующих участках

    .

    Уже предполагалось [2], что появление неразрушающихся мутантов в зерновых культурах было быстрым процессом.Генетические соображения показывают, что такой сдвиг мог произойти в течение нескольких десятков поколений отбора [63–67]. Если так, то комплекс Ohalo II, содержащий высокий процент рахисов домашнего типа, может быть самым ранним признаком высокой скорости одомашнивания [68].

    В заключение, наши находки представляют собой самые ранние признаки присутствия проторосников на территории, предшествовавшей одомашниванию растений в эпоху неолита примерно на 11000 лет. Это исследование впервые показывает, что проторосняки росли поблизости от человеческих лагерей и, скорее всего, также на небольших возделываемых участках.Дальнейшие открытия хорошо сохранившихся археоботанических комплексов периода между Охало II и первыми памятниками эпохи неолита в регионе предоставят недостающие свидетельства испытаний и неудач в раннем земледелии.

    Дополнительная информация

    S1 Рис. Сезонная доступность растений и птиц, обнаруженных на Охало II, на основе 68 видов птиц [38]] и 101 вида растений.

    Эти два типа пищевых ресурсов компенсируют друг друга: птицы более доступны осенью / зимой, а растения преобладают весной / летом.Цифры в кружках указывают количество видов перелетных птиц, которые в настоящее время посещают этот район только один раз в год. Их ели с декабря по июнь в Охало II, и поэтому они служат хорошим индикатором сезона заселения этого участка. Эти и другие остатки фауны указывают на круглогодичное заселение Охало II.

    https://doi.org/10.1371/journal.pone.0131422.s001

    (DOCX)

    Благодарности

    Эта работа является частью Ph.D. диссертация А.С. в Университете Бар-Илан. Мы благодарим Симху Лев-Ядуна (Хайфский университет) за комментарии и улучшения в более ранних версиях этой статьи; Агарь Лашнер и персоналу гербария Еврейского университета в Иерусалиме за их помощь; Ави Шмида (Еврейский университет) за предоставление записей Rotem; также Яэль Малер-Сласки и Анат Хартманн-Шенкман за помощь в лаборатории и Карли Голодец за помощь в редактировании. Этот проект был щедро поддержан грантом на индивидуальные исследования 711/08 Израильского научного фонда «Экономическое разнообразие и использование пространства между занятиями верхнего палеолита Охало II: многослойный пространственный анализ растительных остатков» для E.W. Проект раскопок был щедро поддержан Археологическим фондом Ирен Леви Сала CARE, Израильским научным фондом (грант № 831/00), Иерусалимским центром антропологических исследований, L.S.B. Фонд Лики, Фонд MAFCAF, Музей предыстории им. Стекелиса в Хайфе, Национальное географическое общество, Управление древностей Израиля. Особая благодарность Институту археологии Зинмана (Хайфский университет). И последнее, но не менее важное: мы очень благодарны Джорджу Уиллкоксу и двум анонимным рецензентам за отличные комментарии и предложения, которые значительно улучшили рукопись.

    Вклад авторов

    Задумал и спроектировал эксперименты: AS EW. Проведены эксперименты: AS EW. Проанализированы данные: AS EW. Предоставленные реагенты / материалы / инструменты анализа: YM IGY. Написал статью: AS EW DN MS OBY IGY.

    Список литературы

    1. 1. Добли Дж. Ф., Гаут Б. С., Смит Б. Д. (2006) Молекулярная генетика одомашнивания сельскохозяйственных культур. Ячейка 127: 1309–1321. pmid: 171
    2. 2. Зохари Д., Хопф М., Вайс Э. (2012) Одомашнивание растений в Старом Свете: происхождение и распространение одомашненных растений в Юго-Западной Азии, Европе и Средиземноморском бассейне.Оксфорд, Великобритания: Издательство Оксфордского университета.
    3. 3. Alpert P, Bone E, Holzapfel C (2000) Инвазивность, инвазивность и роль экологического стресса в распространении неместных растений. Перспективы экологии, эволюции и систематики растений 3: 52–66.
    4. 4. Зедер М.А. (2011) Истоки сельского хозяйства на Ближнем Востоке. Текущая антропология 52: S221 – S235.
    5. 5. Bouquet-Appel J-P (2011) Демографические изменения в сельском хозяйстве во время и после сельскохозяйственных изобретений.Curr Anthropol 52: S497 – S449S.
    6. 6. Томас У.Л., редактор (1956) Роль человека в изменении лица земли. Чикаго: Университет Чикадж Пресс.
    7. 7. Смит Б.Д. (2007) Построение ниши и поведенческий контекст приручения растений и животных. Эволюционная антропология: проблемы, новости и обзоры 16: 188–199.
    8. 8. Смит Б.Д. (2011) Общие модели создания ниш и управления ресурсами «диких» растений и животных в небольших доиндустриальных обществах.Философские труды Королевского общества биологических наук 366: 836–848.
    9. 9. Смит Б.Д., Зедер М.А. (2013) Начало антропоцена. Антропоцен 4: 8–13.
    10. 10. Джонс К.Г., Лоутон Г.Х., Шахак М. (1994) Организмы как инженеры экосистем. Ойкос 69: 373–386.
    11. 11. Daehler CC (2003) Сравнение производительности одновременно встречающихся местных и чужеродных инвазивных растений: значение для сохранения и восстановления. Annu Rev Ecol Evol Syst 34: 183–211.
    12. 12. Дэвис М.А., Грайм Дж. П., Томпсон К. (2000) Колеблющиеся ресурсы в растительных сообществах: общая теория инвазивности. Журнал экологии 88: 528–534.
    13. 13. Delcourt HR (1987) Влияние доисторического земледелия и землепользования на естественную растительность. Тенденции в экологии и эволюции 2: 39–44.
    14. 14. Зохари М. (1950) Сегетальные растительные сообщества Палестины. Vegetatio 2: 387–411.
    15. 15. Willcox G (2012) Поиск истоков возделываемых сорняков на Ближнем Востоке.История растительности и археоботаника 21: 163–167.
    16. 16. Харлан JR, de Wet JMJ (1965) Некоторые мысли о сорняках. Экономическая ботаника 19: 16–24.
    17. 17. Hillman GC, Hedges R, Moore AMT, Colledge SM, Pettitt P (2001) Новое свидетельство культивирования латегляциальных злаков в Абу-Хурейре на Евфрате. Голоцен 11: 383–393.
    18. 18. Джонс Дж. (2002) Экология сорняков как метод археоботанического признания методов растениеводства. Acta Palaeobotanica 42: 185–193.
    19. 19. Чернов М.К., Пейли С.М. (1998) Динамика производства зерновых в Телль-эль-Ифшаре в период среднего бронзового века. Журнал полевой археологии 25: 397–416.
    20. 20. Чернов М.К. (1988) Археоботанический материал из Тель-эль-Ифшара. Уолтем, Массачусетс: Университет Брандейса.
    21. 21. Хартманн-Шенкман А., Кислев М., Галили Е., Меламед Ю., Вайс Е. (2015) Вторжение в новую нишу: обязательные сорняки в неолитическом Атлит-Яме, Израиль. История растительности и археоботаника 24: 9–18.
    22. 22. Надел Д., Вайс Э, Симчони О, Цацкин А., Данин А. и др. (2004) Хижина каменного века в Израиле является старейшим в мире свидетельством наличия постельных принадлежностей. Слушания Национальной академии наук Соединенных Штатов Америки 101: 6821–6826. pmid: 150
    23. 23. Piperno DR, Weiss E, Holst I, Nadel D (2004) Обработка зерен дикорастущих злаков в верхнем палеолите, выявленная с помощью анализа зерна крахмала. Природа 430: 670–673. pmid: 15295598
    24. 24. Надел Д., Пиперно Д.Р., Холст I, Снир А., Вайс Э. (2012) Новые свидетельства обработки дикорастущих злаков в Охало II, лагере, построенном 23 000 лет назад, на берегу Галилейского моря в Израиле.Античность 86: 990–1003.
    25. 25. Вайс Э., Кислев М.Э., Симхони О., Надел Д. (2005) Мелкозернистые дикие травы как основной продукт питания на 23000-летнем участке Охало II, Израиль. Экономическая ботаника: S125-S134.
    26. 26. Снир А., Надель Д., Вайс Е. (2015) Приготовление растительной пищи на двух последовательных этажах в верхнем палеолите Охало II, Израиль. Журнал археологической науки 53: 61–71.
    27. 27. Надел Д. (2002) Охало II — Лагерь рыбаков-охотников-собирателей на берегу Галилейского моря, возрастом 23 000 лет.Хайфа: Музей Хехта, Хайфский университет, Каталожный № 20.
    28. 28. Рабинович Р. (2002) Кости млекопитающих: окружающая среда, еда и инструменты. В: Надель Д., редактор. Охало II — лагерь рыбаков-охотников-собирателей, построенный 23 000 лет назад, на берегу Галилейского моря. Хайфа: Музей Хехта, Хайфский университет, Каталог № 20. С. * 24– * 27.
    29. 29. Симмонс Т. (2002) Птицы из Охало II. В: Надель Д., редактор. Охало II — лагерь рыбаков-охотников-собирателей, построенный 23 000 лет назад, на берегу Галилейского моря.Хайфа: Музей Хехта, Хайфский университет, Каталог № 20. С. * 32– * 36.
    30. 30. Belmaker M (2002) Мелкие млекопитающие из Охало II и окружающая среда, «Наши мыши, портящие землю» (Царств 1, VI: 5). В: Надель Д., редактор. Охало II — лагерь рыбаков-охотников-собирателей, построенный 23 000 лет назад, на берегу Галилейского моря. Хайфа: Музей Хехта, Хайфский университет, Каталог № 20. С. * 37– * 38.
    31. 31. Зоар I (2002) Рыба и рыбалка в Охало II. В: Надель Д., редактор.Охало II — лагерь рыбаков-охотников-собирателей, построенный 23 000 лет назад, на берегу Галилейского моря. Хайфа: Музей Хехта, Хайфский университет, Каталог № 20. С. * 28– * 31.
    32. 32. Надел Д., Данин А., Веркер Е., Шик Т., Кислев М. Е., Стюарт К. (1994) 19000-летние скрученные волокна из Охало II. Современная антропология 35: 451–458.
    33. 33. Надел Д., Цацкин А., Бельмейкер М., Боаретто Э., Кислев М., Миенис Х. и др. (2004) На берегу колеблющегося озера: экологические свидетельства из Охало II (19 500 Б.П.). Израильский журнал наук о Земле 53: 207.
    34. 34. Hershkovitz I, Edelson G, Spiers M, Arensburg B, Nadel D, Levi B (1993) Мужчина Охало II — необычные находки в передней грудной клетке и плечевом поясе образца 19000-летнего возраста. Международный журнал остеоархеологии 3: 177–188.
    35. 35. Рабинович Р., Надель Д. (1995) Костные инструменты из Охало II — морфологическое и функциональное исследование. Митекуфат Хэвен, Журнал доисторического общества Израиля 26: 32–63.
    36. 36.Hershkovits I, Spiers MS, Frayer D, Nadel D, Wish-Baratz S, Arensburg B (1995) Охало II h3: Скелет возрастом 19000 лет из заболоченного участка в Галилейском море, Израиль. Американский журнал физической антропологии 96: 215–234. pmid: 7785722
    37. 37. Кислев М.Е., Надель Д., Карми I (1992) Зерновая и фруктовая диета эпохи эпипалеолита (19000 лет назад) в Охало II, Галилейское море, Израиль. Обзор палеоботаники и палинологии 73: 161–166.
    38. 38. Симмонс Т., Надель Д. (1998) Орнитофауна древнего эпипалеолитического поселения Охало II (19 400 лет до н.э.), Израиль: разнообразие видов, среда обитания и сезонность.Международный журнал остеоархеологии 8: 79–96.
    39. 39. Зохар И., Бельмейкер М., Надел Д., Гафни С., Горен М., Хершковиц И. и др. (2008) Живые и мертвые: Как тафономические процессы изменяют относительную численность и целостность скелета пресноводных рыб? Палеогеография, палеоклиматология, палеоэкология 258: 292–316.
    40. 40. Надел Д., Гершковиц I (1991) Новые данные о существовании и человеческие останки с самого раннего левантийского эпипалеолита. Современная антропология 32: 631–635.
    41. 41. Надел Д. (2002) Обрубка кремня в помещении / на открытом воздухе и мелкие остатки обломков: свидетельства из затопленного лагеря Охало II (19,5 тыс. Лет назад, долина реки Иордан). Литическая технология 26: 118–137.
    42. 42. Надел Д., Карми I, Сегал Д. (1995) Радиоуглеродное датирование Охало II: археологические и методологические последствия. Журнал археологической науки 22: 811–822.
    43. 43. Вайс Э. (2002) Проблемы реконструкции человеческого хозяйства и общества жителей эпипалеолитической стоянки Охало II по макрофоссильным ботаническим остаткам [Ph.Д.]. Рамат-Ган: Университет Бар-Илан.
    44. 44. Weiss E, Kislev ME, Simchoni O, Nadel D, Tschauner H (2008) Зона приготовления растительной пищи на полу хижины верхнего палеолита в Охало II, Израиль. Журнал археологической науки 35: 2400–2414.
    45. 45. Weiss E, Wetterstrom W, Nadel D, Bar-Yosef O (2004) Новый взгляд на широкий спектр: свидетельства по остаткам растений. Слушания Национальной академии наук Соединенных Штатов Америки 101: 9551–9555.pmid: 15210984
    46. 46. Смит Б.Д. (2007) Лучшие инженеры по экосистемам. Наука 315: 1797–1798. pmid: 17395815
    47. 47. Фейнбрун-Дотан Н., Данин А. (1991) Аналитическая флора Эрец-Исраэль. Иерусалим (Евр.): Кана.
    48. 48. Дафни А. (1984) Съедобные дикорастущие растения Израиля. Иерусалим (евр.): Общество защиты природы в Израиле.
    49. 49. Фейнбрун-Дотан Н (1978) Флора Палестина. Иерусалим: Израильская академия наук и гуманитарных наук.
    50. 50. Фейнбрун-Дотан N (1986) Флора Палестина. Иерусалим: Израильская академия наук и гуманитарных наук.
    51. 51. Зохари М (1966) Флора Палестина. Иерусалим: Израильская академия наук и гуманитарных наук.
    52. 52. Зохари М (1972) Флора Палестина. Иерусалим: Израильская академия наук и гуманитарных наук.
    53. 53. Кислев М.Е. (1989) Преодомашненные злаки в докерамический период неолита. В: Гершковиц I, редактор.Люди и культура в процессе перемен. Оксфорд: Международная серия BAR. С. 147–151.
    54. 54. Snir A, Weiss E (2014) Новый морфометрический метод для дифференциации дикого и одомашненного ячменя с помощью измерений внутри рахиса. Журнал археологической науки 44: 69–75.
    55. 55. Кислев М.Е., Вайс Э., Хартманн А. (2004) Стимулы к посеву и началу земледелия: Наземный сбор дикорастущих злаков. Слушания Национальной академии наук Соединенных Штатов Америки 101: 2692–2695.pmid: 14976246
    56. 56. Харлан Дж. Р. (1967) Урожай дикой пшеницы в Турции. Археология 20: 197–201.
    57. 57. Танно Ки, Уиллкокс Дж. (2012) Различение колосков дикой и домашней пшеницы и ячменя с участков раннего голоцена на Ближнем Востоке. История растительности и археоботаника 21: 107–115.
    58. 58. Андерсон П.К. (1999) Экспериментальное выращивание, сбор и обмолот дикорастущих злаков: их актуальность для интерпретации использования артефактов эпохи эпипалеолита и неолита.В: Андерсон ПК, редактор. Предыстория сельского хозяйства. Лос-Анджелес: Институт археологии Калифорнийского университета. С. 118–144.
    59. 59. Унгер-Гамильтон Р. (1999) Эксперименты по сбору дикорастущих злаков и других растений. В: Андерсон ПК, редактор. Предыстория сельского хозяйства. Лос-Анджелес: Институт археологии Калифорнийского университета. С. 145–152.
    60. 60. Ямада С. (2000) Развитие неолита: Литический анализ использования и износа основных типов инструментов в Южном Леванте.Кембридж, Массачусетс: Гарвардский университет.
    61. 61. Громан-Ярославский I (2014) Переход к экономике раннего неолита, реконструированный с помощью функционального анализа клинков: на примере позднатуфских и докерамических неолитических памятников А в бассейне Салибия, южная часть Иорданской долины. Хайфа: Хайфский университет.
    62. 62. Кислев М.Е., Меламед Ю., Лангсам Ю. (2006) Остатки растений из Тель-Баташа. В: Паниц-Коэн Н., Мазар А., редакторы. Тимна (Тель-Баташ) III: Находки второго тысячелетия до нашей эры.Иерусалим: Еврейский университет. С. 295–311.
    63. 63. Зохари Д. (1969) Прародители пшеницы и ячменя в связи с одомашниванием и распространением сельского хозяйства в Старом Свете. В: Ucko PJ, Dimbleby GW, редакторы. Одомашнивание и эксплуатация растений и животных. Лондон: Дакворт. С. 47–66.
    64. 64. Hillman GC, Davies MS (1999) Показатели одомашнивания дикого типа пшеницы и ячменя при примитивном культивировании. В: Андерсон П., редактор. Предыстория земледелия, новые экспериментальные и этнографические подходы.Лос-Анджелес: Институт археологии Калифорнийского университета. С. 70–102.
    65. 65. Кислев М.Е. (2002) Происхождение однолетних культур путем агроэволюции. Израильский журнал наук о растениях 50: S85–88.
    66. 66. Танно Ки, Уиллкокс Дж. (2006) Насколько быстро была одомашнена дикая пшеница? Наука 311: 1886. pmid: 16574859
    67. 67. Fuller DQ (2007) Контрастные модели в темпах одомашнивания и одомашнивания сельскохозяйственных культур: недавние открытия археоботаники из Старого Света.Анналы ботаники 100: 903–924. pmid: 17495986
    68. 68. Аббо С., Лев-Ядун С., Гофер А. (2012) Одомашнивание растений и эволюция сельскохозяйственных культур на Ближнем Востоке: о событиях и процессах. Критические обзоры в науках о растениях 31: 241–257.

    Перейти к основному содержанию Поиск